高海拔和低海拔部分家畜促红细胞生成素(EPO)基因遗传多态性研究

EPO基因论文 猪论文 牦牛论文 黄牛论文 绵羊论文
论文详情
促红细胞生成素(EPO)是一种调节红细胞生成的激素,其基因的多态性可能对解释高原动物适应性有着重要的作用。本研究选择青藏高原低氧环境中的藏猪、牦牛和乔科、欧拉、甘加三个藏羊群体及较低海拔的大白猪、长白猪、杜洛克猪、早胜牛和蒙古羊、滩羊、小尾寒羊为研究对象,对其促红细胞生成素(EPO)基因进行SNPs分析。结果如下:本实验将不同猪种的EPO基因全序测通,并测得了牦牛、黄牛和绵羊的EPO第3、4、5外显子和第3、4内含子序列。1、根据NCBI中提交的挪威野猪EPO基因序列(AJ249746)设计引物,对合作猪和大白猪、长白猪、杜洛克猪的EPO基因检测结果表明:5个猪种群共发现共发现8个单倍型,27个变异位点。对各个单倍型比较分析发现,所研究的四个猪品种共计10头无一与NCB(IAJ249746)中提交的野猪EPO单倍型即Hap1一致。单倍型Hap4,5,6,7,8为合作猪中出现的单倍型,Hap2,3为低海拔猪种所有,其中Hap2仅在杜洛克猪中发现,而大白猪、长白猪皆为单倍型Hap3。比较各个变异位点,藏猪与长白猪、大白猪和杜洛克猪相比有两个种间特征突变位点,分别为51bp处碱基G的缺失,该位点位于EPO基因5’端上游的旁侧序列-37bp处,397bp处碱基A→G的突变,该位点位于EPO第一内含子。值得注意的是合作猪P27在1236bp至1249bp这一段出现了长达14bp的碱基缺失。猪EPO基因共编码194个氨基酸,所有猪种EPO基因的mRNA序列仅有6个突变位点,而编码区序列仅发现有2个突变位点,即mRNA的343bp处的A→T的突变,479bp处的T→C突变,其中A→T的突变为有义突变,引起了酪氨酸(tyr,Y)→苯丙氨酸(phe,F)的突变。2、根据NCBI中提交的三江黄牛EPO基因序列(EF374049)设计引物,对甘南牦牛和平凉早胜牛EPO基因部分片段检测结果表明:共发现8个单倍型,31个变异位点。对各个单倍型比较分析发现,在所研究的甘南牦牛与早胜牛中与NCBI中提交的三江黄牛的EPO基因序列一致的只有一个,即单倍型同为Hap1的早胜牛cBN31。总结得出:单倍型Hap1,5,6,7,8为早胜牛中出现的单倍型,Hap2,3,4为牦牛所有。对分析对各变异位点分析发现:早胜牛群体内EPO基因部分片段的核苷酸序列变异位点有6个,分别为:21bp处C→T,619bp处T碱基缺失,690bp处G→A,877bp处C→T,1156bp处T→C,1230bp处A→G。甘南牦牛群体内分析发现3个变异位点,分别为:177bp处A→G,338bp处T→A,842bp处C→T。而对比甘南牦牛与早胜牛核苷酸序列共发现种间特征突变位点22个,分别为264bp处A→G,265bpT→A,295bp处T→C,581bp处G→T1084bp处C→T,以及早胜牛在564bp至580bp共17个碱基的缺失。甘南牦牛338处发生T→A,导致亮氨酸(L)→谷氨酸(Q)的变化,与其他学者研究一致。研究新发现早胜牛在690bp处发生G→A,引起丙氨酸(A)→苏氨酸(T)的变换。3、根据NCBI中提交的三江黄牛EPO基因序列(EF374049)设计引物,对欧拉、甘伽、乔科三种藏羊和特克赛尔羊、小尾寒羊、滩羊、蒙古羊EPO基因部分片段检测表明:5个绵羊品种共存在6个单倍型,4个变异位点。其中位于序列1206处C→G的突变在5个绵羊品种中都有发现,1076bp处C→A突变仅在藏羊群体的甘加羊和乔科羊中发现,268bp处G→A突变仅在海拔较低的小尾寒羊中发现,而1161处C→T突变为乔科羊和中等海拔高度的蒙古羊中所见。单倍型分析共发现6个单倍型,总结得出:Hap1为5个绵羊品种所共有,Hap2为除小尾寒羊外其他绵羊共有, Hap3为高海拔绵羊甘加羊和乔科羊所有, Hap4为中等海拔的蒙古羊与高海拔乔科羊所有,Hap5为低海拔绵羊小尾寒羊所有,Hap6为中等海拔的蒙古羊所有。突变均发生在内含子,没有引起氨基酸突变。
摘要第4-6页
Abstract第6-8页
第一部分 文献综述第11-27页
    1.EPO 基因研究进展第11-20页
        1.1 EPO 基因概述第11页
        1.2 EPO 基因结构特点第11-12页
        1.3 EPO 的主要生物学功能第12-18页
        1.4 低氧促进 EPO 基因表达的相关研究第18-20页
    2. 实验动物介绍第20-23页
    3. SNPs 分子标记及其应用第23-25页
        3.1 SNPs 简述和特点第23-24页
        3.2 SNPs 检测方法及其在家畜遗传育种中的应用第24-25页
    4. 本项目研究的意义第25-27页
第二部分 材料与方法第27-31页
    1. 试验材料第27-28页
        1.1 样本信息第27页
        1.2 试验主要试剂(见附件 1)第27页
        1.3 溶液与缓冲液的配制(见附件 2)第27页
        1.4 主要仪器设备(见附件 3)第27-28页
    2. 试验方法第28-30页
        2.1 DNA 提取方法第28页
        2.2 引物设计与合成第28-29页
        2.3 PCR 扩增体系的建立第29-30页
        2.4 PCR 扩增产物的琼脂糖凝胶电泳检测第30页
    3.基因测序与分析第30-31页
第三部分 试验结果第31-47页
    1. 猪 EPO 基因多态性检测第31-36页
        1.1 猪基因组 DNA 样品的检测结果第31页
        1.2 猪 EPO 基因扩增结果第31-32页
        1.3 猪 EPO 基因测序结果第32-34页
        1.4 猪 EPO 基因核苷酸序列单倍型分析第34-35页
        1.5 猪 EPO 基因氨基酸序列分析第35-36页
    2. 牦牛和黄牛 EPO 基因多态性检测第36-41页
        2.1 牦牛和黄牛基因组 DNA 样品的检测结果第36页
        2.2 牦牛和黄牛 EPO 基因部分片段扩增结果第36-37页
        2.3 牦牛和黄牛 EPO 基因部分片段测序结果第37-39页
        2.4 牦牛和黄牛 EPO 基因部分核苷酸序列单倍型分析第39-40页
        2.5 牦牛和黄牛 EPO 基因部分片段氨基酸序列分析第40-41页
    3. 绵羊 EPO 基因多态性检测第41-45页
        3.1 绵羊基因组 DNA 样品的检测结果第41-42页
        3.2 绵羊 EPO 基因部分片段扩增结果第42页
        3.3 绵羊 EPO 基因部分片段测序结果第42-44页
        3.4 绵羊 EPO 基因部分核苷酸序列单倍型分析第44页
        3.5 绵羊 EPO 基因部分片段氨基酸序列分析第44-45页
    4. 不同物种间 EPO 基因部分片段系统发育分析第45-47页
第四部分 分析与讨论第47-51页
    1. 血样的采集及 DNA 的提取第47页
    2. 影响 PCR 扩增的因素第47-48页
    3. 影响 EPO 基因测序的因素第48页
    4. EPO 基因多态性第48-51页
第五部分 结论第51-52页
参考文献第52-63页
致谢第63-64页
个人简介第64-65页
导师简介第65-68页
附件 1第68页
附件 2第68-70页
附件 3第70页
附件 4第70-72页
论文购买
论文编号ABS617108,这篇论文共72页
会员购买按0.30元/页下载,共需支付21.6
不是会员,注册会员
会员更优惠充值送钱
直接购买按0.5元/页下载,共需要支付36
只需这篇论文,无需注册!
直接网上支付,方便快捷!
相关论文

点击收藏 | 在线购卡 | 站内搜索 | 网站地图
版权所有 艾博士论文 Copyright(C) All Rights Reserved
版权申明:本文摘要目录由会员***投稿,艾博士论文编辑,如作者需要删除论文目录请通过QQ告知我们,承诺24小时内删除。
联系方式: QQ:277865656