KLF9在机体糖异生中的作用及PGC1α诱导Cidec表达的研究

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第一部分KLF9对PGC1a表达的调控以及在糖异生中的作用肝脏糖异生对于长时间饥饿情况下生物体的生存十分必要,但是在糖尿病情况下被非正常开启。已知转录共激活因子过氧化物酶体增殖受体Y共激活因子1(PGC1a)在此过程中发挥重要的生理功能。PGC1a是糖异生酶基因的上游调控因子,对于这些酶表达的激活发挥重要的调控功能。PGC1a被cAMP通路和转录因子CREB的激活所调控。KLF9是Kruppel-like factors锌指蛋白家族的成员,又称为基础转录序列结合蛋白1(BTEB1),是结合高GC结构序列的转录因子。KLF9能够调节孕酮受体(PR)的表达,其缺失会降低子宫PR目标基因对于孕酮的敏感性,导致生育能力低下。在肝脏中,KLF9结合促进HNF4a,调节甲状腺激素在肝脏中的作用。KLF9能够结合PPARγ启动子,调控脂肪组织的发育。通过体内和体外实验,我们证明了KLF9能够结合到PGC1a启动子并调节的PGC1a的表达,进而,对肝脏糖异生酶的表达量进行调控。在糖尿病模型小鼠上,降低KLF9的表达量,能够有效提高机体对胰岛素的敏感性,并且对糖尿病造成的高血糖具有改善效果。本实验首次证明了KLF9在机体糖代谢中发挥功能。第二部分PGC1a与PPARy共激活cidec的表达CIDEC基因是CIDE家族参与机体脂肪代谢合成的又一重要成员。有关它的报道主要关注于CIDEC在脂生成过程中的作用。在脂肪细胞分化过程中其表达水平显著升高。最近研究指示了CIDEC基因能促进细胞甘油三酯生成,并刺激脂滴增大。PPARγ是PPAR (Peroxisome Proliferator-Activated Receptor)家族的成员之一。它能与RXR形成异源二聚体,通过结合DNA启动子上的PPRE元件对基因的表达进行调控。PPARy是肝脏中负责调控脂肪合成的关键转录因子,在肝脏的表达比较低,一旦过表达后会引起脂肪肝的发生。本实验通过构建5’删切和顺式原件突变的启动子,运用HepG2细胞中双荧光报告基因实验检测PPARy和(?)(?)GC1a对CIDEC的共激活作用并确定顺式作用原件。使用PPARy特异激动剂pioglitazone刺激3T3-L1细胞检测(?) CIDEC的(?)水平。在3T3-L1细胞系中,过表达nRNA检CIDEC,测脂肪合成及能量代谢相关基因的水平。通过腺病毒感染在小鼠肝原代细mRNA胞中过表达检测肝脏细胞中脂肪变化。最终证明CIDEC,和PPARy能够显PGCla著激活的启动子,在体内引起脂肪的积累。CIDEC
第一部分 KLF9对PGC1A表达的调控以及在糖异生中的作用第5-43页
    摘要第5-6页
    ABSTRACT第6-7页
    前言第7-9页
    材料和方法第9-35页
        1 实验材料第9-18页
            1.1 动物第9页
            1.2 菌株第9页
            1.3 质粒载体第9-13页
            1.4 细胞株第13页
            1.5 实验用工具酶以及DNA,蛋白marker第13-14页
            1.6 试剂盒第14页
            1.7 主要化学试剂(按试剂公司分类)第14-15页
            1.8 主要仪器及设备第15页
            1.9 分析软件第15页
            1.10 实验所用引物第15-18页
        2 实验方法第18-34页
            2.1 质粒载体的构建第18-22页
                2.1.1 PCR法扩增目的片段第18-19页
                2.1.2 PCR点突变KLF-9在PGC1α启动子上的结合位点第19页
                2.1.3 DNA琼脂糖凝胶电泳第19页
                2.1.4 DNA及载体的酶切第19-20页
                2.1.5 片段与载体的连接第20页
                2.1.6 连接产物的转化第20-21页
                2.1.7 阳性克隆的筛选第21页
                2.1.8 质粒DNA的大量制备第21-22页
            2.2 细胞培养实验第22-25页
                2.2.1 细胞的培养条件第22页
                2.2.2 细胞的复苏,传代培养与冻存第22页
                2.2.3 细胞计数与存活测试第22-23页
                2.2.4 肝原代细胞的分离以及培养第23-24页
                2.2.5 3T3-L1细胞的培养及诱导分化第24-25页
                2.2.6 转染实验第25页
            2.3 重组腺病毒的构建与包装第25-26页
            2.4 腺病毒感染细胞第26-27页
            2.5 染色体免疫共沉淀实验第27-28页
            2.6 DNA、RNA提取及cDNA的合成第28-30页
                2.6.1 总RNA的提取第28页
                2.6.2 总DNA和蛋白质的分离提取第28-29页
                2.6.3 总RNA逆转录合成cDNA第29-30页
            2.7 WESTERN BLOT第30-32页
                2.7.1 SDS-PAGE电泳第30页
                2.7.2 SDS-PAGE电泳步骤第30-31页
                2.7.3 转膜第31页
                2.7.4 Western印迹杂交第31-32页
            2.8. Real-Time PCR实验第32-33页
            2.9 dual luciferase reporter assay system实验第33页
            2.10 小鼠血糖测定第33页
            2.11 GTT,ITT实验第33-34页
        3 实验流程第34-35页
    实验结果第35-40页
        1. KLF9和PGC1A基因表达被饥饿诱导第35-36页
        2. KLF9调控PGC1A转录是通过结合在PGC1A启动子上实现第36-37页
        3. KLF9和PGC1A在体内的相互作用第37页
        4. 干扰KLF9表达对糖异生调控基因表达的影响第37-38页
        5. 干扰KLF9表达降低肝原代细胞的葡萄糖输出第38-40页
    讨论第40-42页
    小结第42-43页
第二部分 PGC1A与PPARF共激活CIDEC的表达第43-53页
    摘要第43-44页
    ABSTRACT第44-45页
    前言第45-46页
    材料与方法见第一部分第46页
    实验结果第46-50页
        1. PPARΓ与PGC1A直接结合于CIDEC的启动子而调控转录第46-47页
        2. PPARΓ特异激动剂PIOGLITAZONE可促进CIDEC MRNA的转录第47页
        3. CIDEC过表达的3T3-L1细胞中对脂肪合成以及能量代谢相关基因的影响第47-48页
        4. 在肝脏细胞中过表达CIDEC基因明显增加细胞质脂滴的体积第48-50页
    讨论第50-52页
    小结第52-53页
参考文献第53-58页
附录第58-60页
综述第60-69页
    参考文献第65-69页
致谢第69-70页
作者简历第70-71页
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