共表达猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5蛋白和猪瘟病毒E2蛋白的重组腺病毒的免疫原性分析

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猪繁殖与呼吸综合征(Porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS)亦称“猪蓝耳病”,是由猪繁殖与呼吸综合征病毒(Porcine reproductive and respiratory syndrome virus,PRRSV)引起的一种重要传染病,主要危害母猪和仔猪,几乎所有养猪国家都有本病流行,该病已成为影响世界养猪业发展的重大传染病之一。世界动物卫生组织(OIE)将其列入需申报的OIE疾病名录(OIE-listed diseases)。猪瘟(Classical swine fever,CSF)是由猪瘟病毒(Classical swine fever virus,CSFV)引起猪的一种高度接触性、致死性传染病,OIE将其列入OIE疾病名录。人5型复制缺陷型腺病毒载体,近年来在活载体疫苗的研制上得到了广泛应用。由于缺失了病毒非必需基因区(E1/E3),使其能够携带大片段的外源基因,而且只能在特定的细胞系中增殖,安全性得到保证。此外,该载体系统还引入了CMV启动子,使得外源基因可以高水平表达,从而确保了有效的免疫效力。口蹄疫病毒(FMDV)2A基因编码一种自剪切蛋白。目前2A已经广泛应用于基因治疗,同时也为构建二价疫苗提供了新途径。本研究旨在以复制缺陷型人5型腺病毒为载体,构建一株同时表达PRRSV变异株GP5蛋白和CSFV E2蛋白的重组腺病毒疫苗。首先利用重叠PCR将GP5和E2基因通过FMDV 2A序列连接,形成一个完整的ORF,并将其克隆到腺病毒穿梭载体中,通过细菌内同源重组构建共表达PRRSV GP5蛋白和CSFV E2蛋白的重组腺病毒(rAdV-GP52AE2)。间接免疫荧光试验和Western blot证实2个外源基因均获得表达。在小鼠上进行的免疫效力评价结果显示,rAdV-GP52AE2免疫组针对CSFV的中和抗体滴度可达1:128,针对PRRSV的中和抗体滴度为1:16;在淋巴细胞增殖试验中,免疫组与阴性对照组在增殖指数上有显著差异,表明该重组腺病毒可以同时诱导抗PRRSV和CSFV的特异性体液免疫和细胞免疫。为了进一步证实其免疫效力,我们又开展了家兔免疫攻毒试验,结果显示,免疫重组腺病毒rAdV-GP52AE2的家兔产生了猪瘟特异性抗体,并且有效的抵抗了弱毒C-株的攻击,没有出现定型热反应。结果显示,利用具有自动剪切功能的FMDV 2A多肽构建的重组腺病毒有望开发成一种同时预防PRRS和CSF的新型载体疫苗。
摘要第6-7页
Abstract第7页
第一章 绪论第11-21页
    1.1 猪瘟及猪瘟病毒概述第11-13页
        1.1.1 猪瘟第11页
        1.1.2 猪瘟病毒及其基因组结构第11-12页
        1.1.3 猪瘟病毒结构蛋白的结构和功能第12-13页
    1.2 猪瘟疫苗的研究进展第13-14页
        1.2.1 常规疫苗第13页
        1.2.2 基因重组活载体疫苗第13页
        1.2.3 基因重组嵌合疫苗第13页
        1.2.4 基因重组缺失疫苗第13-14页
        1.2.5 亚单位疫苗第14页
        1.2.6 DNA 疫苗第14页
    1.3 猪繁殖与呼吸综合征和猪繁殖与呼吸征病毒概述第14-15页
        1.3.1 猪繁殖与呼吸综合征第14页
        1.3.2 猪繁殖与呼吸综合征病毒第14-15页
        1.3.3 PRRSV 主要结构蛋白的结构和功能第15页
    1.4 PRRS 疫苗研究进展第15-16页
        1.4.1 常规疫苗第15-16页
        1.4.2 基因工程亚单位疫苗第16页
        1.4.3 重组活载体疫苗第16页
        1.4.4 反向遗传技术疫苗第16页
        1.4.5 DNA 疫苗第16页
    1.5 腺病毒载体表达系统第16-19页
        1.5.1 腺病毒概述第16-17页
        1.5.2 腺病毒表达系统概述第17-18页
        1.5.3 腺病毒载体的优缺点第18页
        1.5.4 腺病毒载体在兽医中的应用第18-19页
    1.6 口蹄疫病毒2A 自动剪切多肽第19页
        1.6.1 口蹄疫病毒2A 多肽概述第19页
        1.6.2 口蹄疫病毒2A 的剪切机制第19页
        1.6.3 体外构建基于 FMDV 2A 的多顺反子的特点第19页
    1.7 本研究的背景与目的第19-21页
第二章 共表达 PRRSV GP5 和 CSFV E2 蛋白的重组腺病毒构建及其免疫原性分析第21-39页
    2.1 材料与方法第21-27页
        2.1.1 病毒、细胞和质粒第21页
        2.1.2 主要试剂和仪器第21页
        2.1.3 融合基因 GP5-2A-E2 的 PCR 扩增与基因克隆第21-22页
        2.1.4 重组腺病毒转移载体的构建及鉴定第22-23页
        2.1.5 腺病毒重组质粒的获得及鉴定第23页
        2.1.6 腺病毒重组质粒的转染第23-24页
        2.1.7 重组杆状病毒的 PCR 鉴定及其基因稳定性监测第24页
        2.1.8 重组腺病毒毒价的测定第24页
        2.1.9 应用间接免疫荧光试验检测 GP5 蛋白的表达第24页
        2.1.10 应用间接免疫荧光试验检测E2 蛋白的表达第24-25页
        2.1.11 Western blot 检测重组腺病毒中 GP5 蛋白的表达第25页
        2.1.12 Western blot 检测重组腺病毒中 E2 蛋白的表达第25页
        2.1.13 小鼠免疫接种第25页
        2.1.14 免疫小鼠血清中和试验第25-26页
        2.1.15 淋巴细胞增殖试验第26页
        2.1.16 兔体免疫攻毒试验第26-27页
    2.2 结果第27-37页
        2.2.1 目的片段的获得第27-28页
        2.2.2 重组腺病毒转移载体的构建及酶切鉴定第28-29页
        2.2.3 重组杆粒的 PCR 鉴定第29-30页
        2.2.4 重组腺病毒基因组的PCR 鉴定第30-31页
        2.2.5 PRRSVGP5 蛋白在rAdV-GP52AE2 感染293 细胞中的表达第31-32页
        2.2.6 CSFV E2 蛋白在rAdV-GP52AE2 感染293 细胞中的表达第32-33页
        2.2.7 重组腺病毒毒价的测定结果第33页
        2.2.8 免疫小鼠的 CSFV 特异性抗体产生情况第33-34页
        2.2.9 免疫小鼠可以诱导产生针对 PRRSV 和 CSFV 的特异性中和抗体第34-35页
        2.2.10 免疫小鼠的特异性淋巴细胞增殖水平第35-36页
        2.2.11 重组腺病毒免疫兔体后可以抵抗猪瘟兔化弱毒的攻击第36-37页
    2.3 讨论第37-39页
第三章 结论第39-40页
参考文献第40-47页
致谢第47-48页
作者简历第48页
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