川香29水稻香味基因定位、分子标记辅助育种和基因表达分析

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水稻是全球半数多人口的主食,随着人们生活水平的日益提高,消费者对稻米品质也提出了更高要求。水稻香味是高档优质米的一个重要品质性状;香稻米质优良,香味馥郁,兼具食疗保健作用,愈来愈受到消费者的青睐和市场欢迎。本文以优良籼稻保持系川香29B(或其恢复系29R)为香味供体亲本,美国光身粳稻Lemont、R2(由Lemont选育而来)、美B、P18和G46B为受体亲本,对川香29香味性状进行了遗传分析、基因定位、分子标记辅助选择及基因芯片等多方面的分析,主要结果如下:1.川香29B香味遗传分析与基因定位1.1水稻叶片香味氢氧化钾法鉴定香味是感官性状,其表型鉴定受到外界气候环境诸多影响。以有香味亲本和无香味亲本为对照,对其后代分离群体用氢氧化钾法鉴定叶片香味。通过在不同时间、地点和气候环境下多年试验,发现用氢氧化钾法鉴定水稻叶片香味的最佳时机为雨过天晴后的上午,温度在20~26℃,该时期两对照亲本鉴别的准确率在99%以上,后代分离单株香与不香性状表现非常明显。1.2川香29B香味性状遗传分析川香29B/Le,29B╱R2两组合杂交种F1种子经咀嚼米粒香味鉴定没有香味,其F1植株叶片也均表现没有香味,即川香29B香味性状受隐性基因控制:在这两个F2群体中,经x2测验,无香味单株与极端香味单株分离比符合3:1,该结果由相应F2:3家系香味表型进一步得到验证,表明川香29B香味性状受一对单隐性基因控制。1.3香味基因分子标记定位在均匀分布于水稻12条染色体上700对SSR引物中,有268对在29B与Lemont存在多态性,多态性频率为38.29%。其中位于第8染色体上的RM23097、RM515、RM8264、RM7049、RM7356和RM7556等标记与香味性状存在连锁。本研究开发SSR标记Aro1和Aro7在这两亲本间也存在多态性,香味基因fgr被定位在SSR标记Aro7(0.57cM)和RM515(0.71cM)之间。在29B/R2 F2群体中,将香味基因fgr定位于RM23120(0.52 cM)和RM3459(1.23 cM)两标记之间。2.分子标记辅助选育香稻保持系与恢复系2.1香味基因连锁标记基因型鉴定前人报道的香味基因连锁标记RM223、和SCU-Rice-SSR-1在本研究亲本29B与Lemont中不存在多态性,RM42存在多态性但不与香味性状连锁。本研究所鉴定与香味基因连锁的8个标记在来自不同区域的13个香稻品种中基因型存在差异,因而对于香味基因的分子标记辅助选择,需要根据不同的香稻材料,确定选用的连锁标记及其对应的基因型。2.2水稻香味的ISSR分析从40条ISSR引物中筛选到的24个用于对目前生产应用较多的23份香稻与非香稻材料进行检测,共检测到208个多态性片段,扩增带的分子量在100~2200bp区间。不同引物扩增出的清晰多态条带数在5~16条之间(表2),扩增出5~9条的引物有16个,占66.7%;扩增出10~16条的引物有8个,占33.3%,平均每个引物扩增到8.67个多态性带;ISSR标记能将23份水稻完全区分开。推测ISSR标记812中多态性条带(1050bp左右)可能与水稻香味性状有关。2.3分子标记辅助选育香稻保持系与恢复系以川香29B(或其恢复系29R)为供体亲本,无香味恢复系P18和无香味保持系美B分别为受体轮回亲本,获得P18/29R的F1和美B/29B组合的F2。用与香味基因紧密连锁的两侧标记RM23120和RM3459在P18/29R组合中选择香味纯合基因型单株;Aro1和RM3459在美B/29B组合中选择香味纯合基因型单株;同期进行农艺性状香味表型选择和遗传背景分析。此后经过成都正季和海南南繁一年两季,连续回交;获得一批目标基因纯合且农艺性状稳定的优良香稻保持系和恢复系。3.水稻香味的基因芯片分析3.1有香味与无香味近等基因池差异基因从29B近等基因系(NIL)BC6F3群体中选择遗传背景完全相同,只在目标基因型存在差异的有香味与无香味单株,其分蘖期叶片分别等量混合用于芯片分析。在第8染色体目标区域,芯片在有香味与无香味近等基因池检测到4个差异基因:AT3G48170(geneid)参与氨基乙酸、丝氨酸和苏氨酸新陈代谢;AT4G27070和AT5G54810参与苯基丙氨酸、酪氨酸和色氨酸生物合成;AT4G34030参与缬氨酸、亮氨酸和异亮氨酸的分化降解。其中AT3G48170即为前人报道的sk-2香味基因,也是本研究分子标记定位区域的基因。在分子功能(Go)和生物过程(Pathway)方面,芯片在水稻全基因组共检测到23个(不包括重复)差异基因。这些基因是一些转录启动激活、DNA控制的RNA酶活性和应激反应因子,主要参与生理生化调控和硫化物新陈代谢。进一步RT-PCR分析验证了该芯片结果的可靠性。3.2水稻香味机理及生化途径根据芯片结果,结合前人研究及生物信息学分析,发现胆碱是香味主基因sk-2调控中的重要物质。而胆碱(Choline)是维生素B复合体之一,该物质在水稻籽粒中主要存在谷壳和籽粒表面,从而找到了水稻米粒香味主要分布在表面的原因。在香稻材料中,BADH2基因第7外显子发生8个碱基的缺失与3个单核苷酸多态性,使终止密码子提前出现,BADH2基因不再编码甜菜碱脱氢酶(Betaine-aldehydedehydrogenase,BADH),引起甜菜碱醛(Betaine aldehyde)到甜菜碱(Glycine betaine)氧化过程的终止。生成的甜菜碱醛便在胆碱脱氢酶(choline dehydrogenase)作用下,参与反应:Betaine aldehyde+FAD+H2O<=>FADH2+Betaine,该反应与脯氨酸降解Ⅰ存在FAD与FADH2的竞争,使L-脯氨酸积累,最终引起1-吡咯啉-2-羧酸盐的产生。推测香味主成分2-乙酰-1-吡咯啉是由1-吡咯啉-2-羧酸盐通过甲基化作用一步或多步反应而来。另外,硫化合物可能与水稻香味物质的形成和调控密切相关。
摘要第4-7页
ABSTRACT第7-10页
第一章 文献综述第14-31页
    1.水稻香味的研究进展第14-22页
        1.1 水稻香味的渊源及发展第14-15页
        1.2 水稻香味的类型及成分第15-17页
            1.2.1 水稻香味的类型第15-16页
            1.2.2 香米香味的成分第16-17页
        1.3 水稻香味的鉴定方法第17页
        1.4 水稻香味遗传与基因定位研究第17-20页
            1.4.1 水稻香味的遗传第17-18页
            1.4.2 水稻香味定位研究第18-20页
        1.5 水稻香味基因的克隆与分子标记辅助选择第20页
        1.6 水稻香味基因作用机理第20-22页
            1.6.1 水稻香味表现与环境因素第20-21页
            1.6.2 水稻香味的生化基础第21-22页
    2.香味在其它植物中的研究第22-26页
        2.1 其它植物中香味成分的研究第22-23页
        2.2 其它植物中香味基因及分子标记的研究第23-24页
        2.3 其它植物中香味的医疗保健作用第24页
        2.4 香味成分鉴定与分析第24-25页
        2.5 香味的医疗保健作用机理第25-26页
    3.基因芯片及RT-PCR研究进展第26-30页
        3.1 基因芯片原理第27-28页
        3.2 基因芯片在植物中研究进展第28-29页
        3.3 香味机理的基因芯片研究第29-30页
    4.本研究的目的意义第30-31页
第二章 水稻香味遗传分析与基因定位第31-51页
    摘要:第31页
    关键词:第31-32页
    1 材料与方法第32-39页
        1.1 供试材料第32页
        1.2 香味鉴定第32-33页
        1.3 遗传分析第33页
        1.4 主要仪器试剂第33-34页
            1.4.1 主要仪器第33-34页
            1.4.2 主要试剂第34页
        1.5 DNA提取及SSR分析第34-35页
            1.5.1 DNA提取第34-35页
            1.5.2 琼脂搪电泳及DNA检测第35页
        1.6 SSR引物与PCR扩增第35-36页
        1.7 聚丙烯酰胺电泳第36-37页
            1.7.1 6%聚丙烯酰胺胶配制(1升)第36页
            1.7.2 聚丙烯酰胺胶电泳及银染第36-37页
        1.8 群分法寻找与香味基因共分离标记第37-38页
        1.9 引物设计第38页
        1.10 遗传作图与PCR序列分析第38-39页
    2 结果与分析第39-47页
        2.1 香味性状的遗传分析第39-40页
        2.2 水稻香味基因在29B/Le中的分子标记定位第40-42页
        2.3 水稻香味基因在29B/R2中的分子标记定位第42-44页
        2.4 水稻香味后选基因第44-46页
        2.6 在香稻与非香稻材料间BAD2基因序列的变异第46-47页
    3.讨论第47-51页
        3.1 香味遗传鉴定与试验设计第47-48页
        3.2 香味性状连锁标记偏分离第48-49页
        3.3 香味基因与分子标记辅助选择第49-51页
第三章 分子标记辅助选择优良香稻保持系和恢复系第51-66页
    摘要:第51页
    关键词:第51-53页
    1.材料和方法第53-55页
        1.1 保持系材料及选择方法第53页
        1.2 恢复系材料及选择方法第53-54页
        1.3 香稻材料及基因型鉴定第54页
        1.4 ISSR扩增反应第54页
        1.5 数据统计分析第54-55页
    2.结果与分析第55-64页
        2.1 SSR标记RM42和RM223基因型鉴定第55页
        2.2 香味基因连锁标记对香稻资源基因型鉴定第55-57页
        2.3 有香味与无香味水稻资源遗传背景分析第57-60页
            2.3.1 ISSR标记多态性第57-58页
            2.3.2 ISSR标记812与水稻香味的关系第58-59页
            2.3.3 ISSR标记聚类分析第59-60页
        2.4 川香29B香味基因导入保持系美B中第60-61页
        2.5 川香29B香味基因导入恢复系P18第61-64页
    3.讨论第64-66页
        3.1 香稻种质资源与标记辅助选择第64页
        3.2 多态性分子标记的选择第64-65页
        3.3 轮回亲本基因组背景的恢复第65-66页
第四章 水稻香味的基因芯片分析第66-101页
    摘要:第66-67页
    关键词:第67-68页
    1.材料与方法第68-72页
        1.1 近等基因系材料第68页
        1.2 主要实验试剂仪器第68-69页
            1.2.1 总RNA提取第68页
            1.2.2 第一链cDNA标记第68页
            1.2.3 洗膜与染色第68-69页
            1.2.4 主要设备第69页
            1.2.5 分析软件第69页
        1.3 反转录(采用Promage公司RT-Kit)第69-70页
            1.3.1 反转录引物第69页
            1.3.2 RNA质量检测第69-70页
            1.3.3 反转录步骤第70页
        1.4 RT-PCR反应第70-71页
        1.5 利用KEGG和Biocarta数据库对差异表达基因的信号传导通路分析第71-72页
    2.结果与分析第72-97页
        2.1 29B近等基因系BC6F3材料的获得第72-74页
            2.1.1 29B近等基因系BC6F3材料的构建第72-73页
            2.1.2 29B近等基因系材料的分子鉴定第73-74页
            2.1.3 29B近等基因系BC6F3基因池构建第74页
        2.2 29B近等基因系基因芯片结果第74-83页
            2.2.1 RNA完整性与纯度检测第74-75页
            2.2.2 有香味基因池A1和无香味基因池N1芯片扫描结果第75页
            2.2.3 芯片数据列表第75-77页
            2.2.4 A1和N1的基因表达变化第77-78页
            2.2.3 有香味与无香味近等基因系差异基因比较第78-83页
        2.3 水稻差异基因的RT-PCR分析第83-85页
            2.3.1 RT-PCR基因及其引物序列第83-84页
            2.3.2 RT-PCR分析第84-85页
        2.4 水稻香味性状主基因与微效QTL分析第85-91页
            2.4.1 与香味性状有关的基因或QTLs第85-87页
            2.4.2 第8染色体目标区域差异基因第87页
            2.4.3 全基因组差异基因第87页
            2.4.4 香味基因序列同源性第87-91页
        2.5 水稻香味的分子调控分析第91-93页
            2.5.1 sk-2基因调控香味在稻米籽粒中的分布第91页
            2.5.2 BADH2基因失活促进2AP生物合成的途径第91-92页
            2.5.3 香味生理调控和硫化物新陈代谢第92-93页
        2.6 水稻香味主基因sk-2基因序列及特异引物第93-97页
            2.6.1 sk-2基因序列分析引物第93-94页
            2.6.2 FG9引物扩增序列及变异第94-96页
            2.6.3 FG10引物扩增变异及CAPS引物第96-97页
    3.讨论第97-101页
        3.1 香味基因鉴定策略第97-98页
        3.2 近等基因池A1和N1差异基因第98-99页
        3.3 水稻香味基因及其主成分2AP的生物合成第99-101页
主要结论与存在的问题第101-103页
参考文献第103-116页
致谢第116-117页
发表文章情况第117页
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