RNAi技术沉默玉米支链淀粉合成相关基因表达的研究

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玉米是一年生禾本科单子叶植物,是我国重要的粮食作物,也是全世界粮食总产量最高的作物。玉米淀粉有直链淀粉和支链淀粉两种,直链淀粉广泛应用于食品、医疗用品、纺织等领域中,具有较高的商业价值,但仅占总淀粉含量的25%。因此,培育高直链淀粉玉米成为目前研究的主要内容。影响玉米淀粉生物合成的关键酶有四种:腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶(AGP)、淀粉合成酶(SS)、淀粉分支酶(SBE)和去分支酶(DBE)。本实验用RNAi技术成功构建了五个干扰载体。将SBE基因片段构建成发夹结构的表达载体pCAMB-RNAi-SBE,融合基因片段DBE::SSS构成的发夹结构的表达载体pCAMB-DBE::SSS,本实验首次将干扰基因片段(SBEIIb,DBE::SSS)和过表达基因(AGP)构建于同一个载体上:pCAMB-RSA和pCAMB-DBE::SSS-AGP,同时用overlap PCR方法构建SBE基因的人工microRNA干扰载体pCAMBI-miRNA(SBE)。从而使多基因同时转化玉米成为可能,并且为进一步提高玉米直链淀粉含量提供了理论和实践基础。同时初步优化并建立了一套较为稳定的玉米愈伤组织遗传转化体系。在30个玉米自交系中筛选出四D300作为后期遗传转化的受体,愈伤状态稳定,能够较好的分化出苗。通过农杆菌侵染法、花粉管通道法及显微注射法转化玉米,获得转基因植株共14株。在农杆菌侵染过程中,以pCAMBI-miRNA(SBE)为载体,用GUS瞬时表达来检测农杆菌侵染三种不同玉米组织的转化效率,结果发现:农杆菌侵染法转化玉米愈伤的初始转化效率最高,约为67.1%。并且获得了1株PCR检测为阳性的植株。GUS瞬时表达检测花粉管通道法及显微注射法(载体:pCAMBI-miRNA(SBE))转基因的可行性时发现:花粉管通道法得到的转基因胚中能被染成蓝色,而显微注射法获得的种子中,在注射部位没有染成蓝色,在胚中观察到蓝色,具体的研究机理尚不清楚,有待进一步的研究。通过花粉管通道法转基因玉米,经PCR-southern检测为阳性的T0代植株12株,显微注射法获得PCR-southern检测为阳性的植株1株。T1代转基因玉米种子淀粉含量的测定结果表明:春317转基因籽粒的总淀粉含量与对照相比增加1.09~5.8%,春301转基因籽粒的总淀粉含量较对照增加0.59~2.53%。
中文摘要第4-6页
Abstract第6-7页
第1章 文献综述第13-29页
    1.1 影响玉米淀粉生物合成的关键酶第15-19页
        1.1.1 腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶第17页
        1.1.2 淀粉合成酶第17页
        1.1.3 淀粉分支酶第17-18页
        1.1.4 淀粉去分支酶第18-19页
    1.2 RNA 干扰技术第19-23页
        1.2.1 RNAi 的发现第19-20页
        1.2.2 RNAi 的种类第20-22页
        1.2.3 RNAi 作用机理第22-23页
    1.3 RNA 干扰的作用特点第23-24页
    1.4 RNA 干扰的研究进展第24页
    1.5 玉米遗传转化系统的研究进展第24-25页
        1.5.1 愈伤组织诱导第24-25页
        1.5.2 分化第25页
    1.6 植物转基因方法概况第25-27页
        1.6.1 农杆菌介导法第26页
        1.6.2 基因枪法第26页
        1.6.3 花粉管通道法第26-27页
        1.6.4 显微注射法(子房注射法)第27页
        1.6.5 其他转化方法第27页
    1.7 本研究的目的和意义第27-29页
第2章 支链淀粉合成相关基因 RNAi 载体构建第29-68页
    2.1 材料与方法第29-35页
        2.1.1 实验材料第29页
        2.1.2 菌株与载体第29-31页
        2.1.3 试剂第31-32页
        2.1.4 实验所需试剂及培养基的配制第32页
        2.1.5 仪器第32-33页
        2.1.6 植物材料第33页
        2.1.7 玉米基因组 DNA 的提取第33-34页
        2.1.8 玉米总 RNA 的提取第34页
        2.1.9 cDNA 第一链的合成第34-35页
    2.2 实验方法第35-49页
        2.2.1 植物表达载体的构建第35-36页
        2.2.2 合成支链淀粉的相关基因的克隆第36-38页
        2.2.3 合成支链淀粉相关基因的 PCR 扩增第38-41页
        2.2.4 琼脂糖凝胶电泳回收目的基因片段第41-42页
        2.2.5 回收产物的平末端加 A第42页
        2.2.6 目的基因片段与 T 载体连接第42-43页
        2.2.7 大肠杆菌 Top10 感受态细胞的制备(CaCl2法)第43页
        2.2.8 转化大肠杆菌感受态细胞第43-44页
        2.2.9 质粒 DNA 的提取第44-45页
        2.2.10 重组质粒的 PCR 鉴定第45页
        2.2.11 重组质粒的酶切鉴定第45-46页
        2.2.12 测序第46页
        2.2.13 目的基因片段与中间载体的连接第46-48页
        2.2.14 目的基因片段与表达载体 pCAMBIA3301 的连接第48-49页
    2.3 结果与分析第49-66页
        2.3.0 玉米 DNA 的提取第49-50页
        2.3.1 幼胚总 RNA 的提取第50-51页
        2.3.2 cDNA 第一链的合成第51页
        2.3.3 合成支链淀粉相关基因的克隆第51-53页
        2.3.4 目的基因片段与克隆载体的连接及鉴定第53-56页
        2.3.5 目的基因片段与中间载体的连接及鉴定第56-60页
        2.3.6 目的基因片段与表达载体 pCAMBIA3301 的连接及鉴定第60-66页
    2.4 讨论第66-67页
    2.5 结论第67-68页
第3章 玉米遗传转化体系的建立及不同转基因方法的研究第68-105页
    3.1 实验材料第68页
        3.1.1 受体材料第68页
        3.1.2 菌株第68页
        3.1.3 实验仪器第68页
    3.2 实验方法第68-81页
        3.2.1 Southern blot 杂交液的配制第68-69页
        3.2.2 培养基的配置第69-71页
        3.2.3 愈伤组织的诱导第71页
        3.2.4 分化第71页
        3.2.5 生根第71页
        3.2.6 炼苗及移栽第71-72页
        3.2.7 农杆菌介导玉米不同组织部位的遗传转化第72-74页
        3.2.8 花粉管通道法介导玉米遗传转化第74-75页
        3.2.9 显微注射法介导的玉米遗传转化第75页
        3.2.10 转基因植株鉴定第75-80页
        3.2.11 转基因植株淀粉含量测定第80-81页
    3.3 结果与分析第81-101页
        3.3.1 玉米愈伤组织的诱导第81-83页
        3.3.2 愈伤组织的分化第83-85页
        3.3.3 生根第85页
        3.3.4 炼苗及移栽第85-86页
        3.3.5 农杆菌侵染愈伤组织第86-87页
        3.3.6 农杆菌侵染玉米幼胚第87-88页
        3.3.7 农杆菌侵染下胚轴第88-89页
        3.3.8 花粉管通道法第89-90页
        3.3.9 显微注射法第90页
        3.3.10 GUS 瞬时检测第90-94页
        3.3.11 转基因检测第94-98页
        3.3.12 T_0代转基因植株田间生物性状分析第98-100页
        3.3.13 T_1代转基因玉米籽粒形态分析第100页
        3.3.14 T_1代转基因植株淀粉含量的测定第100-101页
    3.4 讨论第101-104页
    3.5 结论第104-105页
全文结论第105-106页
参考文献第106-118页
硕士期间工作第118-119页
致谢第119页
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