RNAi技术沉默玉米支链淀粉合成相关基因表达的研究
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玉米是一年生禾本科单子叶植物,是我国重要的粮食作物,也是全世界粮食总产量最高的作物。玉米淀粉有直链淀粉和支链淀粉两种,直链淀粉广泛应用于食品、医疗用品、纺织等领域中,具有较高的商业价值,但仅占总淀粉含量的25%。因此,培育高直链淀粉玉米成为目前研究的主要内容。影响玉米淀粉生物合成的关键酶有四种:腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶(AGP)、淀粉合成酶(SS)、淀粉分支酶(SBE)和去分支酶(DBE)。本实验用RNAi技术成功构建了五个干扰载体。将SBE基因片段构建成发夹结构的表达载体pCAMB-RNAi-SBE,融合基因片段DBE::SSS构成的发夹结构的表达载体pCAMB-DBE::SSS,本实验首次将干扰基因片段(SBEIIb,DBE::SSS)和过表达基因(AGP)构建于同一个载体上:pCAMB-RSA和pCAMB-DBE::SSS-AGP,同时用overlap PCR方法构建SBE基因的人工microRNA干扰载体pCAMBI-miRNA(SBE)。从而使多基因同时转化玉米成为可能,并且为进一步提高玉米直链淀粉含量提供了理论和实践基础。同时初步优化并建立了一套较为稳定的玉米愈伤组织遗传转化体系。在30个玉米自交系中筛选出四D300作为后期遗传转化的受体,愈伤状态稳定,能够较好的分化出苗。通过农杆菌侵染法、花粉管通道法及显微注射法转化玉米,获得转基因植株共14株。在农杆菌侵染过程中,以pCAMBI-miRNA(SBE)为载体,用GUS瞬时表达来检测农杆菌侵染三种不同玉米组织的转化效率,结果发现:农杆菌侵染法转化玉米愈伤的初始转化效率最高,约为67.1%。并且获得了1株PCR检测为阳性的植株。GUS瞬时表达检测花粉管通道法及显微注射法(载体:pCAMBI-miRNA(SBE))转基因的可行性时发现:花粉管通道法得到的转基因胚中能被染成蓝色,而显微注射法获得的种子中,在注射部位没有染成蓝色,在胚中观察到蓝色,具体的研究机理尚不清楚,有待进一步的研究。通过花粉管通道法转基因玉米,经PCR-southern检测为阳性的T0代植株12株,显微注射法获得PCR-southern检测为阳性的植株1株。T1代转基因玉米种子淀粉含量的测定结果表明:春317转基因籽粒的总淀粉含量与对照相比增加1.09~5.8%,春301转基因籽粒的总淀粉含量较对照增加0.59~2.53%。
中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第1章 文献综述 | 第13-29页 |
1.1 影响玉米淀粉生物合成的关键酶 | 第15-19页 |
1.1.1 腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶 | 第17页 |
1.1.2 淀粉合成酶 | 第17页 |
1.1.3 淀粉分支酶 | 第17-18页 |
1.1.4 淀粉去分支酶 | 第18-19页 |
1.2 RNA 干扰技术 | 第19-23页 |
1.2.1 RNAi 的发现 | 第19-20页 |
1.2.2 RNAi 的种类 | 第20-22页 |
1.2.3 RNAi 作用机理 | 第22-23页 |
1.3 RNA 干扰的作用特点 | 第23-24页 |
1.4 RNA 干扰的研究进展 | 第24页 |
1.5 玉米遗传转化系统的研究进展 | 第24-25页 |
1.5.1 愈伤组织诱导 | 第24-25页 |
1.5.2 分化 | 第25页 |
1.6 植物转基因方法概况 | 第25-27页 |
1.6.1 农杆菌介导法 | 第26页 |
1.6.2 基因枪法 | 第26页 |
1.6.3 花粉管通道法 | 第26-27页 |
1.6.4 显微注射法(子房注射法) | 第27页 |
1.6.5 其他转化方法 | 第27页 |
1.7 本研究的目的和意义 | 第27-29页 |
第2章 支链淀粉合成相关基因 RNAi 载体构建 | 第29-68页 |
2.1 材料与方法 | 第29-35页 |
2.1.1 实验材料 | 第29页 |
2.1.2 菌株与载体 | 第29-31页 |
2.1.3 试剂 | 第31-32页 |
2.1.4 实验所需试剂及培养基的配制 | 第32页 |
2.1.5 仪器 | 第32-33页 |
2.1.6 植物材料 | 第33页 |
2.1.7 玉米基因组 DNA 的提取 | 第33-34页 |
2.1.8 玉米总 RNA 的提取 | 第34页 |
2.1.9 cDNA 第一链的合成 | 第34-35页 |
2.2 实验方法 | 第35-49页 |
2.2.1 植物表达载体的构建 | 第35-36页 |
2.2.2 合成支链淀粉的相关基因的克隆 | 第36-38页 |
2.2.3 合成支链淀粉相关基因的 PCR 扩增 | 第38-41页 |
2.2.4 琼脂糖凝胶电泳回收目的基因片段 | 第41-42页 |
2.2.5 回收产物的平末端加 A | 第42页 |
2.2.6 目的基因片段与 T 载体连接 | 第42-43页 |
2.2.7 大肠杆菌 Top10 感受态细胞的制备(CaCl2法) | 第43页 |
2.2.8 转化大肠杆菌感受态细胞 | 第43-44页 |
2.2.9 质粒 DNA 的提取 | 第44-45页 |
2.2.10 重组质粒的 PCR 鉴定 | 第45页 |
2.2.11 重组质粒的酶切鉴定 | 第45-46页 |
2.2.12 测序 | 第46页 |
2.2.13 目的基因片段与中间载体的连接 | 第46-48页 |
2.2.14 目的基因片段与表达载体 pCAMBIA3301 的连接 | 第48-49页 |
2.3 结果与分析 | 第49-66页 |
2.3.0 玉米 DNA 的提取 | 第49-50页 |
2.3.1 幼胚总 RNA 的提取 | 第50-51页 |
2.3.2 cDNA 第一链的合成 | 第51页 |
2.3.3 合成支链淀粉相关基因的克隆 | 第51-53页 |
2.3.4 目的基因片段与克隆载体的连接及鉴定 | 第53-56页 |
2.3.5 目的基因片段与中间载体的连接及鉴定 | 第56-60页 |
2.3.6 目的基因片段与表达载体 pCAMBIA3301 的连接及鉴定 | 第60-66页 |
2.4 讨论 | 第66-67页 |
2.5 结论 | 第67-68页 |
第3章 玉米遗传转化体系的建立及不同转基因方法的研究 | 第68-105页 |
3.1 实验材料 | 第68页 |
3.1.1 受体材料 | 第68页 |
3.1.2 菌株 | 第68页 |
3.1.3 实验仪器 | 第68页 |
3.2 实验方法 | 第68-81页 |
3.2.1 Southern blot 杂交液的配制 | 第68-69页 |
3.2.2 培养基的配置 | 第69-71页 |
3.2.3 愈伤组织的诱导 | 第71页 |
3.2.4 分化 | 第71页 |
3.2.5 生根 | 第71页 |
3.2.6 炼苗及移栽 | 第71-72页 |
3.2.7 农杆菌介导玉米不同组织部位的遗传转化 | 第72-74页 |
3.2.8 花粉管通道法介导玉米遗传转化 | 第74-75页 |
3.2.9 显微注射法介导的玉米遗传转化 | 第75页 |
3.2.10 转基因植株鉴定 | 第75-80页 |
3.2.11 转基因植株淀粉含量测定 | 第80-81页 |
3.3 结果与分析 | 第81-101页 |
3.3.1 玉米愈伤组织的诱导 | 第81-83页 |
3.3.2 愈伤组织的分化 | 第83-85页 |
3.3.3 生根 | 第85页 |
3.3.4 炼苗及移栽 | 第85-86页 |
3.3.5 农杆菌侵染愈伤组织 | 第86-87页 |
3.3.6 农杆菌侵染玉米幼胚 | 第87-88页 |
3.3.7 农杆菌侵染下胚轴 | 第88-89页 |
3.3.8 花粉管通道法 | 第89-90页 |
3.3.9 显微注射法 | 第90页 |
3.3.10 GUS 瞬时检测 | 第90-94页 |
3.3.11 转基因检测 | 第94-98页 |
3.3.12 T_0代转基因植株田间生物性状分析 | 第98-100页 |
3.3.13 T_1代转基因玉米籽粒形态分析 | 第100页 |
3.3.14 T_1代转基因植株淀粉含量的测定 | 第100-101页 |
3.4 讨论 | 第101-104页 |
3.5 结论 | 第104-105页 |
全文结论 | 第105-106页 |
参考文献 | 第106-118页 |
硕士期间工作 | 第118-119页 |
致谢 | 第119页 |
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