发育早期大鼠海马脑片CA1区锥体神经元离子通道特征研究

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[目的]神经细胞膜离子通道的活动特性与神经元的功能直接相关,本论文研究发育早期4个周龄组(1w,2w,3w,4w)大鼠海马CA1区锥体神经元全细胞跨膜总电流、全细胞钠通道电流、全细胞钾通道电流、瞬时外向钾电流和全细胞钙通道电流的变化规律,包括激活、失活、失活后恢复等方面的特征变化,探索大鼠海马锥体细胞膜Na+, K+,Ca2+电压门控型离子通道发育的关键期,为研究学习记忆的发育提供支持。[方法]实验动物是出生后1w,2w,3w,4w,4个周龄组的SD大鼠,每组8只,分别制备海马脑片。应用膜片钳技术Axon 700B膜片钳系统记录脑片海马CA1区锥体神经元全细胞跨膜总电流、全细胞钠通道电流、全细胞外向总钾电流、瞬时外向钾电流和全细胞钙通道电流及其激活、失活等特性变化。应用Clampfit 10.2和Origin 7.5软件获取全细胞钠通道电流、瞬时外向钾电流和全细胞钙通道电流的I-V曲线,激活、失活、及失活后恢复动力学曲线,应用曲线拟合方法得到与之对应的半数激活电压、半数失活电压、斜率因子、失活后恢复时间常数等相关参数,进行统计学检验各组间是否存在差异。[结果]1.用发育早期4个周龄组大鼠制备的脑片活性良好,显微镜下海马区结构清晰,CA1区锥体神经元饱满、轴突明显、立体感强。2.Na+通道:(1)随着周龄的增大钠通道电流的I-V曲线向左移动,钠通道最大电流密度增大,1w,2w,3w,4w组对应的最大电流分布密度(pA/pF)分别为:-139.89±9.47,-147.98±9.39,-229.20±15.42,-271.54±22.78。以生后2w至3w电流密度增大最为显著;(2)钠通道电流的激活曲线向复极化的方向移动,4个组对应的半数激活电压(mV)分别为:-44.65±0.39,-47.42±0.56,-54.79±0.61,-58.44±0.57;(3)失活后恢复时间缩短,4个组对应的恢复时间常数(ms)分别为:9.30±0.642,11.15±0.84,7.95±0.55,7.18±0.56;(4)失活动力学没有显著变化,4个组对应的半数失活电压(mV)分别为:-52.29±0.73,-51.98±0.94,-51.44±0.72,-49.65±0.73。3.K+通道:(1)4个组全细胞瞬时外向钾最大电流密度随周龄增大而增大,1w,2w,3w,4w组对应的值(pA/pF)分别为133.11±14.36,182.10±8.55,212.80±15.98,235.86±14.60;(2)4个组半数激活电压(mV)分别为:6.25±2.38,10.88±1.71,5.31±2.46,2.690±2.75;(3)4个组半数失活电压(mV)分别为:-58.41±0.59,-56.35±0.90,-58.06±2.13,-60.37±0.90;(4)4个组恢复时间常数(ms)分别为33.14±3.19,33.78±4.22,35.13±3.92,36.19±3.62。4.Ca2+通道:(1)4个组全细胞钙通道最大电流密度随周龄的增大而增大,1w,2w,3w,4w组对应的最大电流密度(pA/pF)分别为:-8.02±0.56,-10.02±0.88,-27.59±1.03,-32.59±1.04,以2w至3w电流密度增大最为显著;(2)全细胞钙电流的激活曲线失活曲线均向左移动,4个组对应的半数激活电压(mV)分别为-6.94±0.11,-4.72±0.41,-11.72±1.05,-12.36±1.32,(3)4个组对应的半数失活电压(mV)分别为-5.35±2.06,5.43±1.93,-17.80±3.37,-24.88±2.43。[结论]1.发育早期(1w,2w,3w,4w)大鼠海马CA1区锥体神经元的Na+,K+,Ca2+等电压门控离子通道分布,通道的激活动力学,失活动力学随周龄增大而变化,反映了离子通道的发育状态。2.出生后2-3w是大鼠海马CA1区锥体神经元钠通道的快速发育期,此期间锥体神经元钠离子通道的分布显著增大,钠通道的激活曲线左移,半数激活电压显著降低,以上结果表明钠通道更容易被激活,失活后恢复曲线左移,恢复时间常数变小,钠通道的恢复更为迅速.3.大鼠脑发育早期,从1w到4wCAl锥体神经元细胞膜上钾离子通道的分布密度随出生周龄增大而增大,但激活和失活以及失活后恢复曲线特征未见有明显特征变化。4.大鼠出生后2-3w是海马CA1区锥体神经元钙离子通道处于快速发育期,期间钙离子通道最大电流密度显著增大,钙离子通道的激活、失活曲线均左移,半数激活、失活电压显著降低表明在此期间钙离子通道更易被激活,也更易失活。
中文摘要第4-7页
Abstract第7-9页
目录第10-14页
第一章 前言第14-24页
    1.1 研究现状、成果第14-22页
        1.1.1 离子通道特征研究第14-19页
            (1) 离子通道的分类第14-15页
            (2) 电压门控性离子通道第15-19页
                ① 电压门控性钠通道第15-16页
                ② 电压门控性钾通道第16-17页
                ③ 电压门控性钙通道第17-19页
        1.1.2 神经系统的发育与离子通道第19-20页
        1.1.3 离子通道特性与学习记忆第20页
        1.1.4 海马与学习记忆第20-22页
            1.1.4.1 海马第20-21页
            1.1.4.2 海马与学习记忆第21-22页
    1.2 本论文的研究目的、意义及主要的工作第22-24页
        1.2.1 研究目的和意义第22-23页
        1.2.2 论文研究的主要内容第23-24页
第二章 原理和方法第24-40页
    2.1 脑片膜片钳技术基本原理第24-29页
        2.1 1 大鼠海马脑片急性培养技术第24页
        2.1.2 膜片钳记录技术第24-29页
            2.1.2.1 离子通道的电生理特征第24-25页
            2.1.2.2 电压钳和电流钳第25-26页
            2.1.2.3 膜片钳技术第26-27页
            2.1.2.4 膜片钳放大器第27页
            2.1.2.5 细胞膜静息电位测量原理第27-28页
            2.1.2.6 可兴奋细胞膜的等效电路第28-29页
    2.2 材料与设备第29-31页
        2.2.1 实验动物及分组第29页
        2.2.2 实验仪器与设备第29页
        2.2.3 实验药品和试剂第29-30页
        2.2.4 实验用溶液及配置第30-31页
    2.3 方法与步骤第31-40页
        2.3.1 海马脑片制备第31页
        2.3.2 急性培养的海马脑片神经元形态学观察第31页
        2.3.3 制备测试离子通道电流的玻璃微电极第31-32页
        2.3.4 膜片钳记录模式及基本操作步骤第32-34页
        2.3.5 全细胞特性记录分析第34-40页
            2.3.5.1 全细胞电流的记录分析第34-35页
            2.3.5.2 全细胞跨膜电流的记录第35-36页
            2.3.5.3 全细胞钠电流特性记录分析第36-37页
                (1) 钠通道电流的测试第36页
                (2) 钠通道电流的激活第36-37页
                (3) 钠通道电流的失活第37页
                (4) 钠通道失活后恢复第37页
            2.3.5.4 全细胞钾电流特性记录分析第37-38页
                (1) 全细胞钾通道电流记录第37页
                (2) 钾通道电流的激活第37-38页
                (3) 钾通道电流的失活第38页
                (4) 钾通道电流的失活后恢复第38页
            2.3.5.5 全细胞钙电流特性记录分析第38-40页
                (1) 细胞钙电流记录刺激方案第38-39页
                (2) 钙通道的激活第39页
                (3) 钙通道的失活第39-40页
第三章 实验结果第40-73页
    3.1 大鼠海马脑片CA1锥体神经元发育早期细胞形态学观察第40页
    3.2 大鼠海马CA1锥体神经元发育早期离子通道特性变化第40-73页
        3.2.1 全细胞跨膜总电流第40-42页
            3.2.1.1 全细胞跨膜总电流随时间的变化关系第41-42页
            3.2.1.2 全细胞内外向峰值电流第42页
        3.2.2 全细胞钠电流第42-54页
            3.2.2.1 钠通道电流的测试第42-44页
            3.2.2.2 全细胞NA电流I-V曲线的变化第44-45页
            3.2.2.3 钠电流(INA)激活曲线变化第45-49页
                (1) 钠平衡电位和反转电位第45-46页
                (2) 发育早期4个周龄组钠通道激活曲线变化第46-49页
            3.2.2.4 发育早期4个周龄组钠通道失活曲线变化第49-51页
            3.2.2.5 发育早期4个周龄组钠通道失活后恢复曲线变化第51-54页
        3.2.3 全细胞钾电流第54-66页
            3.2.3.1 全细胞总钾电流第54-55页
            3.2.3.2 顺时外向钾电流和延迟整流钾电流第55页
            3.2.3.3 发育早期4个周龄组瞬时外向钾电流I-V曲线变化第55-57页
            3.2.3.4 发育早期4个周龄组瞬时外向钾电流激活曲线变化第57-60页
                (1) 钾平衡电位和反转电位第57-58页
                (2) 发育早期4个周龄组IA激活曲线变化第58-60页
            3.2.3.5 发育早期4个周龄组I_A激活曲线变化第60-63页
            3.2.3.6 发育早期4个周龄组I_A失活后恢复曲线变化第63-66页
        3.2.4 全细胞钙电流第66-73页
            3.2.4.1 发育早期4个周龄组全细胞钙电流I-V曲线变化第66-68页
            3.2.4.2 发育早期4个周龄组全细胞钙电流激活曲线变化第68-70页
            3.2.4.3 发育早期4个周龄组全细胞钙电流失活曲线变化第70-73页
第四章 结论与讨论第73-79页
    4.1 结论第73页
    4.2 讨论第73-79页
        4.2.1 脑片制备过程中关键技术问题第73-74页
            (1) 术前准备第73页
            (2) 手术剥离第73-74页
            (3) 切片第74页
            (4) 是否剥离海马第74页
            (5) 孵育时间和温度第74页
        4.2.2 全细胞记录过程中关键技术问题第74-75页
            (1) 封接第74页
            (2) 破膜第74页
            (3) 串联电阻补偿第74-75页
            (4) 电极电容及细胞膜电容补偿第75页
            (5) 漏电流第75页
            (6) 液接电位的矫正第75页
            (7) 空间钳位第75页
            (8) 细胞内容物被电极内液稀释第75页
            (9) 电极内液的成分第75页
        4.2.3 全细胞钠通道电流记录中的关键技术第75-77页
        4.2.4 瞬时外向钾电流记录中的关键技术第77页
        4.2.5 全细胞钙电流记录中的关键技术第77-79页
论文创新点第79-80页
参考文献第80-88页
综述第88-109页
    参考文献第102-109页
致谢第109页
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