水稻抗纹枯病QTLs定位及抗病候选基因发掘

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水稻是世界上最重要的粮食作物之一,而水稻生产受到诸多生物和非生物逆境胁迫。纹枯病为我国水稻三大病害之一,每年造成水稻产量的重大损失,部分地区甚至成为水稻病害之首。深入了解水稻抗病遗传机理,发现和利用抗病相关基因从而提高水稻的抗病性意义重大。本研究通过构建遗传群体、抗病性表型鉴定及分子标记作图,对水稻抗纹枯病QTLs定位;利用全基因组表达谱芯片筛选抗病基因,克隆了2个位于QTL定位区间的候选基因;构建了超表达载体并转化水稻,对抗病基因的分子功能进行了初步研究。研究的主要结果如下:1.利用来自中国广西的一个深水稻品种RSB03,与节水抗旱稻保持系沪旱1B(HH1B)杂交构建了包含286单株的F2群体及包含121个体的重组自交系(RILs)群体(F6:9),采用人工接种的方法对群体及亲本材料进行了抗病性鉴定,鉴定指标包括病级(DG)、病斑长(LL)、病斑高(LH)、相对病斑长(RLL)以及相对病斑高(RLH)等;2.2008年在上海(E1)和海南(E2)以及2009年在上海(E3)和海南(E4)分别对亲本及RILs群体进行表型鉴定,结果表明RSB03的抗病性显著优于HH1B。在四个环境中HH1B的DG、LL及RLL平均值分别为5.2、23.7cm及28.1%,而RSB03则平均为3.3、23.7cm和12.7%,其他几个抗病相关性状也表现同样特点,群体的表型呈现正态分布,对群体进行分子标记并构建遗传连锁图谱,进而对四个不同环境下的抗病QTLs进行定位,结果分别检测到与抗病相关的加性QTLs位点16、12、4和4个,分布于水稻10条染色体上,其中有多个位点被检测到同时控制几个性状,分别检测到上位性互作QTLs位点15、25、23和22对;其中在E4单环境、E2和E4联合定位以及四个环境的联合定位中均检测到位于第11染色体RM5704-RM202区间的抗病QTLs,这一结果与F2群体定位结果接近。3.2007年在海南对F2群体进行抗病性鉴定,亲本HH1B及RSB03的DG分别为5.4和4.3,群体表型呈现正态分布。对群体进行分子标记及QTLs定位分析,共检测到12个主效QTLs位点。在第11和12染色体上分别检测到一个控制DG的加性QTL位点,分别可以解释表型变异的18.07%和12.27%,其中位于第11染色体RM5349-RM202区间的位点还同时控制RLL及RLH两个性状,来自父本RSB03的等位基因起增强抗病性的作用;4.对材料RSB03人工接种纹枯病菌,对接种后第36h叶鞘及空白叶鞘取样提取RNA进行全基因组表达谱芯片,结果发现共有383个基因受纹枯病菌诱导表达且表达量变化倍率超过2倍;对已知功能的基因进行功能分类,发现共涉及生理进程,新陈代谢,细胞组分以及生物调节等21类,其中植物生理进程相关基因最多,达27个;5.结合F2群体QTLs定位及芯片表达谱实验结果,发现在第11染色体RM5389-RM202标记区间有9个差异表达基因(变化倍率≥2.0倍),对这批基因的表达量进行定量PCR分析,发现有5个基因受病菌诱导表达趋势与芯片结果吻合,其中2个基因受病菌诱导上调表达,3个基因下降表达;6.以RSB03材料的cDNA为模板克隆了定位于第11染色体RM5389-RM202区间的2个抗病候选基因Cg3和Cg8,这两个基因的表达量在接种病菌后分别表现为上调和下降,分别对这两个基因构建了超表达载体并转化水稻品种日本晴(Nipponbare),获得了单拷贝后代植株;7.基因Cg3开放阅读框(ORF)长度为930bp,与日本晴序列相比仅有2处碱基差异,但并未导致氨基酸水平上的不同,其编码的蛋白包含3个线粒体转运蛋白结构域,为一种跨膜类蛋白;转基因后代材料中Cg3基因的表达量显著上升,T1代株系与对照(Nipponbare)相比表现了良好的抗病性,其DG平均值为5.1~5.5,LL平均为14.0~21.3cm,而对照材料DG和LL分别为6.5和29.9cm,转基因株系与对照之间的差异达到极显著水平(P<0.01);2010年在上海对转基因T2代材料人工接种,其发病较轻微,平均病级为4.0,低于对照材料的病级4.3,然而转基因材料与对照之间的差异不显著,鉴于当年异常的气候条件,真实病情有待进一步确定;8.基因Cg8的完整ORF全长为825bp,其编码的蛋白与日本晴相比有32个氨基酸(AA)的差异,其蛋白具有前端信号肽、跨膜区及亮氨酸重复等结构域,同样归为一类跨膜类蛋白;定量PCR结果表明转基因后代材料中该基因的表达量显著升高,对T1代进行接种鉴定发现除了转基因材料的株高显著高于对照外,其他几个抗病相关的性状上两者并没有显著差异,对T2进一步鉴定,同样发现转基因后代与对照并无显著差异,转基因后代的抗病性并没有提高。
目录第4-7页
摘要第7-9页
Abstract第9-11页
缩写名词表第12-13页
1 综述部分第13-28页
    1.1 水稻纹枯病病原学研究第13-17页
        1.1.1 纹枯病菌分类学第13页
        1.1.2 形态和生理第13-16页
            1.1.2.1 病原菌形态学第13-14页
            1.1.2.2 病原菌生物学特点第14页
            1.1.2.3 纹枯病菌的致病力分化及菌丝融合群鉴定第14-16页
        1.1.3 纹枯病的发生及病害循环第16-17页
            1.1.3.1 病菌的寄主第16页
            1.1.3.2 发病症状第16页
            1.1.3.3 病害循环第16-17页
    1.2 水稻抗纹枯病的遗传及育种研究第17-28页
        1.2.1 抗病遗传学研究第17-25页
            1.2.1.1 病害诱发方法与技术第17-20页
            1.2.1.2 抗性鉴定指标第20-21页
            1.2.1.3 接种及病害鉴定时间第21-22页
            1.2.1.4 抗病遗传研究进展第22-25页
            1.2.1.5 纹枯病抗性与生育期、株高等农艺性状的关系第25页
        1.2.2 水稻抗纹枯病育种研究进展第25-28页
    1.3 本研究的目的与意义第28页
2 材料与方法第28-37页
    2.1 材料第28-29页
        2.1.1 水稻材料第28-29页
        2.1.2 纹枯病菌第29页
        2.1.3 基因克隆用菌株及载体第29页
    2.2 方法第29-37页
        2.2.1 遗传群体抗纹枯病QTLs定位第29-32页
            2.2.1.1 群体的田间种植第29-30页
            2.2.1.2 纹枯病菌培养及接种第30页
            2.2.1.3 抗病相关性状考察第30-31页
            2.2.1.4 表型数据分析第31页
            2.2.1.5 群体分子标记第31-32页
            2.2.1.6 遗传连锁图谱构建及QTL定位第32页
        2.2.2 水稻接种纹枯病菌后的基因表达谱分析第32-33页
            2.2.2.1 RSB03接种及分时间点取样第32-33页
            2.2.2.2 RNA抽提及表达谱芯片第33页
        2.2.3 候选基因克隆及初步功能研究第33-37页
            2.2.3.1 芯片数据分析及候选基因确定第33页
            2.2.3.2 荧光定量PCR验证芯片实验结果第33-34页
            2.2.3.3 候选基因克隆第34页
            2.2.3.4 超表达载体构建第34-35页
            2.2.3.5 遗传转化第35页
            2.2.3.6 转基因植株阳性检测第35页
            2.2.3.7 转基因植株的Southern blot分析第35-36页
            2.2.3.8 荧光定量PCR分析基因的表达量第36页
            2.2.3.9 转基因材料的抗病性鉴定第36-37页
3 结果与分析第37-94页
    3.1 RILs群体抗纹枯病的遗传定位第37-73页
        3.1.1 亲本与群体的表型第37-41页
        3.1.2 四种环境下RILs中各性状的方差分析与相关性分析第41-43页
        3.1.3 病情鉴定指标之间的相关性第43-44页
        3.1.4 RILs群体基因型分析及遗传连锁图第44页
        3.1.5 单个环境下抗病QTLs分析第44-54页
            3.1.5.1 E1中QTLs分析第44-46页
            3.1.5.2 E2中QTLs分析第46-49页
            3.1.5.3 E3中QTLs分析第49-50页
            3.1.5.4 E4中QTLs分析第50-52页
            3.1.5.5 单一环境中纹枯病抗病QTLs结果比较第52-54页
        3.1.6 多个环境下联合QTLs分析第54-73页
            3.1.6.1 C1的联合QTLs分析第54-55页
            3.1.6.2 C2的联合QTLs分析第55-56页
            3.1.6.3 4个环境下联合QTL_s分析第56-73页
    3.2 F_2群体抗纹枯病的遗传定位第73-78页
        3.2.1 亲本与群体的表型第73-75页
        3.2.2 群体性状间的相关系数第75页
        3.2.3 遗传连锁图谱第75-76页
        3.2.4 QT_s定位结果第76-77页
        3.2.5 F_2群体和RILs群体中QTLs的确认第77-78页
    3.3 表达谱芯片结果第78-82页
        3.3.1 病斑侵染动态观察第78-79页
        3.3.2 基因表达谱芯片第79-82页
    3.4 候选基因克隆及初步功能研究第82-94页
        3.4.1 候选基因确定第82页
        3.4.2 荧光定量PCR验证芯片结果第82-84页
        3.4.3 基因克隆及转基因第84-86页
            3.4.3.1 基因克隆及遗传转化载体构建第84页
            3.4.3.2 转基因植株的阳性检测及拷贝数分析第84-86页
        3.4.4 Cg3基因的功能分析第86-91页
            3.4.4.1 Cg3基因的生物信息学分析第86-87页
            3.4.4.2 T_1代植株的表型鉴定第87-89页
            3.4.4.3 T_2代植株的表型鉴定第89-91页
            3.4.4.4 T_2代植株目的基因的表达量分析第91页
        3.4.5 Cg8基因功能分析第91-94页
            3.4.5.1 Cg8基因的生物信息学分析第91-92页
            3.4.5.2 T_1代植株的表型鉴定第92-93页
            3.4.5.3 T_2代植株的表型鉴定第93页
            3.4.5.4 T_2代植株目的基因的表达量分析第93-94页
4 讨论第94-101页
    4.1 纹枯病抗源第94-95页
    4.2 水稻纹枯病抗性的评价体系第95-96页
    4.3 抗纹枯病QTLs定位第96-98页
        4.3.1 分子标记的数量第96-97页
        4.3.2 RILs群体中QTLs结果的比较第97-98页
    4.4 水稻抗纹枯病相关基因第98-101页
        4.4.1 QTLs定位与表达谱芯片第98-99页
        4.4.2 Cg3和Cg8基因的评价及利用第99-101页
参考文献第101-112页
致谢第112-113页
附录第113-140页
    附录Ⅰ 表达谱芯片数据第113-127页
    附录Ⅱ 实验所用试剂配方及部分实验流程第127-140页
    附录Ⅲ 作者简介第140页
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