根癌农杆菌及PEG介导的苹果树腐烂病菌的遗传转化研究

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苹果树腐烂病(Valsa canker of apple)在我国分布广、发病重,果农称之为苹果树的“癌症”。由于对苹果树腐烂病菌(Valsa mali var. mali)的致病机理知之甚少,制约了对该病害发生规律的深入了解,致使病害防治工作低效、盲目和被动,造成了严重的产量和经济损失。因此,在目前仍没有有效抗病品种的前提下,如何利用分子生物学技术揭示该病菌致病的分子机理,从根本上揭示苹果树腐烂病菌的致病机理及其致病过程中基因调控的机制,明确苹果树腐烂病菌与寄主互作的本质,将大大提高苹果树腐烂病的防治理论与实践研究进程,为生产上科学、有效的控制苹果树腐烂病提供坚实的理论基础。因此,我们以苹果树腐烂病菌分生孢子为转化受体,双元载体pBIG2RHPH2-GFP-GUS为转化供体,利用农杆菌(Agrobacterium tumefaciens)及PEG介导的遗传转化方法对苹果树腐烂病菌(Valsa mali var. mali)进行了转化,初步建立了农杆菌及PEG介导的苹果树腐烂病菌遗传转化体系,并对所获得转化子的性质做了初步的研究,主要研究结果如下:1.采用朱琳(2010)建立的根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens)介导的小麦全蚀病菌的遗传转化体系,略有修改,初步建立了根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens)介导的苹果树腐烂病菌的遗传转化体系,即IM培养基中AS浓度为400μM,农杆菌诱导时间为6 h OD600=0.30,苹果树腐烂病菌分生孢子浓度为106个/mL,与400μL农杆菌菌液25℃共培养3 d。2.通过根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens)介导的苹果树腐烂病菌的遗传转化,我们共获得28个含有潮霉素抗性的转化子,转化效率为平均每106个分生孢子可得6个转化子;经过PCR和Southern杂交检测表明,hph抗性基因已导入苹果树腐烂病菌细胞中;转化子在PDA培养基中继代5次后,全部转化子均能正常生长;对转化子的皿内生长特性进行观察,发现转化子的菌落颜色、产孢能力均发生了变化。3.利用PEG融合法对苹果树腐烂病菌的原生体进行转化。于YEPD内培养48 h的苹果树腐烂病菌分生孢子,在酶解液浓度为50 mg/mL Driselase+10 mg/mL Lysing Enzymes情况下,按10 mL酶液/0.5 g湿菌体比例,酶解2 h时可以释放出4×10~7个/mL原生质体。4.通过PEG介导的苹果树腐烂病菌的遗传转化,我们共获得218个转化子,其转化效率为44个/μg DNA。对转化子的PCR检测和Southern杂交分析表明,hph基因已经整合进苹果树腐烂病菌的基因组中。转化子在PDA培养基中继代5次后,87.5%的转化子仍能正常生长。综上所述,本文建立的根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens)及PEG介导的遗传转化体系可作为进一步建立插入突变体库、筛选致病突变体等的技术平台,进而为克隆相关基因,深入解析苹果树腐烂病菌的致病机制奠定物质和理论基础,最终为病害的有效控制提供新的思路和策略。
摘要第6-8页
ABSTRACT第8-9页
第一章 文献综述第12-21页
    1.1 我国苹果树腐烂病的危害情况第12-14页
    1.2 苹果树腐烂病菌致病机理的研究概况第14页
    1.3 遗传转化及丝状真菌遗传转化的研究进展第14-19页
    1.4 本研究的目的意义及技术路线第19-21页
        1.4.1 本研究的目的意义第19-20页
        1.4.2 本研究的主要内容第20页
        1.4.3 本研究的技术路线第20-21页
第二章 农杆菌介导的苹果树腐烂病菌的转化第21-35页
    2.1 前言第21页
    2.2 材料、试剂、仪器及培养基第21页
        2.2.1 材料第21页
        2.2.2 主要仪器、试剂及培养基配方第21页
    2.3 实验方法第21-27页
        2.3.1 潮霉素抑制苹果树腐烂病菌生长的最佳浓度筛选第21页
        2.3.2 苹果树腐烂病菌分生孢子的培养第21-22页
        2.3.3 潮霉素抑制苹果树腐烂病菌分生孢子萌发的最佳浓度筛选第22页
        2.3.4 农杆菌介导苹果树腐烂病菌的遗传转化体系的建立第22页
        2.3.5 转化子的遗传稳定性分析第22页
        2.3.6 载体pBIG2RHPH2-GFP-GUS 的质粒提取第22-23页
        2.3.7 苹果树腐烂病菌转化子的DNA 的提取第23页
        2.3.8 转化子的PCR 检测第23-25页
        2.3.9 苹果树腐烂病菌转化子的Southern Blotting 分析第25-27页
        2.3.10 转化子的皿内培养性状观察第27页
        2.3.11 突变体的保存第27页
    2.4 结果与分析第27-33页
        2.4.1 潮霉素抑制苹果树腐烂病菌生长的最佳浓度筛选第27-28页
        2.4.2 潮霉素抑制苹果树腐烂病菌分生孢子萌发的最佳浓度筛选第28-29页
        2.4.3 农杆菌介导的苹果树腐烂病菌转化子的获得第29页
        2.4.4 转化子的遗传稳定性分析第29-30页
        2.4.5 野生腐烂菌和转化子 DNA 提取第30页
        2.4.6 转化子中T-DNA 插入的PCR 检测第30页
        2.4.7 转化子中农杆菌污染的检测第30-31页
        2.4.8 苹果树腐烂病菌转化子插入的Southern blotting 分析第31-32页
        2.4.9 转化子的皿内培养性状观察第32-33页
    2.5 讨论第33-35页
第三章 PEG 介导的苹果树腐烂病菌的遗传转化第35-41页
    3.1 前言第35页
    3.2 试剂、仪器及培养基第35页
        3.2.1 材料第35页
        3.2.2 主要仪器和试剂及培养基配方第35页
    3.3 实验方法第35-37页
        3.3.1 苹果树腐烂病菌分生孢子的培养第35页
        3.3.2 苹果树腐烂病菌原生质体的制备与再生第35页
        3.3.3 苹果树腐烂病菌原生质体的再生第35页
        3.3.4 PEG 介导的苹果树腐烂病菌的遗传转化第35-36页
        3.3.5 苹果树腐烂病菌转化子的筛选第36页
        3.3.6 苹果树腐烂病菌基因组DNA 的提取第36页
        3.3.7 苹果树腐烂病菌转化子的PCR 检测第36页
        3.3.8 苹果树腐烂病菌转化子的Southern blotting 检测第36-37页
        3.3.9 转化子的遗传稳定性检测第37页
        3.3.10 突变体的保存第37页
    3.4 结果与分析第37-39页
        3.4.1 菌丝菌龄对苹果树腐烂病菌原生质转化的影响第37页
        3.4.2 苹果树腐烂病菌转化子的筛选第37页
        3.4.3 苹果树腐烂病菌转化子的PCR 检测第37-38页
        3.4.4 转化子的Southern blotting 分析第38-39页
        3.4.5 苹果树腐烂病菌转化子的遗传稳定性分析第39页
    3.5 讨论第39-41页
第四章 结论第41-42页
参考文献第42-47页
致谢第47-48页
附录1 实验所用试剂及培养基配制第48-52页
附录2 实验所用仪器第52-53页
附录3 缩略语表第53-54页
作者简介第54页
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