水稻氮代谢基因的核苷酸多样性及其与产量性状的关联分析

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水稻作为重要的粮食作物,是全世界一半以上人口主食的重要来源。氮是植物生长所必需的大量营养元素之一,是农业生产中限制作物产量的重要因素。氮肥的过量施用不仅造成了严重的环境污染,而且还提高了水稻的生产成本。水稻拥有遗传资源丰富多样的自然群体,建立在自然群体之上的关联分析方法,已成为目前水稻重要基因发掘与利用的热点和焦点。关联分析不仅是发掘新基因的一种有效手段,还是联系结构基因组学和表型组学的一座桥梁,可以直接鉴定出与表型相关的目标基因或等位变异。随着分子生物学和测序技术的不断发展,许多基因被克隆并得到功能验证。本研究主要是利用测序技术,分析水稻氮代谢基因在水稻微核心种质和普通野生稻中的核苷酸多样性,分析群体中各基因及基因之间的连锁不平衡(LD)程度,并利用关联分析研究氮代谢基因与正常和低氮条件下的产量性状之间的关系,旨在发掘氮代谢基因的重要等位变异,为选育水稻氮高效品种提供理论依据。此外,本研究还为水稻氮代谢基因的起源和进化研究奠定了一定的试验数据。主要结果如下:1.利用PCR扩增以及测序技术,获得7个氮代谢基因(包括OsAMT1;1、OsNRT1、OsNR1、OsGS1;1、OsNADH-GOGAT1、OsAS1和OsGDH1)在216份水稻品种(包括籼稻、粳稻和普通野生稻等)中的核苷酸序列信息。经比对拼接之后,各基因的测序序列长度范围为1608 bp (OsNADH-GOGAT1)-3506bp (OsGDH1),总的测序分析长度为16,899 bp。在7个氮代谢基因中总共检测到72个Inde1,它们主要分布在内含子和5’或3’非编码区序列;检测到330个SNP,在籼稻中有97个,粳稻中有71个,栽培稻中有103个,普通野生稻(O. rufipogon)中有240个。2.对7个氮代谢基因的核苷酸多样性进行了比较分析。整体上,普通野生稻的核苷酸多样性要显著地高于籼稻和粳稻。籼稻和粳稻分别保留了普通野生稻大约33.5%和23.4%的核苷酸多样性。3.将样本分为普通野生稻、地方品种和优良品种,进行核苷酸多样性分析后发现,氮代谢基因将近一半(45.7%)的遗传多样性都在水稻驯化(从普通野生稻到地方品种)的过程中丢失了,而在水稻品种改良(从地方品种到优良品种)的过程中基本没有什么变化。4.在190份栽培稻中,对6个氮代谢基因(除了OsAMT1;1)的LD分析结果表明:OsGDH1的LD水平最高,其r2均值为0.96;OsAS1(r2=0.62);OsNRT1(r2= 0.45)和OsNADH-GOGAT1(r2=0.44)表现出中等的LD水平;OsNR1(r2=0.35)和OsGS1;1(r2=0.28)则表现出相对较低的LD水平。而且,在5个氮代谢基因(OsNR1、OsNRT1、OsGS1;1、OsNADH-GOGAT1和OsGDH1)之间也检测到较高的LD水平。5.在190份栽培稻中,7个氮代谢基因共检测到24个主要单倍型(样本数>5),单倍型数目的变化范围为1到5个,平均每个基因有3.4个单倍型。每种单倍型(除了H1)都有明显的偏籼或偏粳的属性。单倍型分析结果表明:尽管这些氮代谢基因分别位于不同的染色体上,但在每一个亚路径中,由于较强的LD水平,籼型的单倍型总是与籼型的在一起,粳型的单倍型总是与粳型的在一起。这可能与籼、粳亚种有不同的地理起源相关。6.利用一般线性模型(考虑群体结构)对各氮代谢基因等位变异或单倍型与性状之间进行关联分析。整体上,OsNRT1与单株产量和结实率相关,OsNR1与千粒重相关,OsGS1:1与结实率和单株产量相关,OsNADH-GOGAT1与单株有效穗数和千粒重相关,OsAS1与单株有效穗数、每穗实粒数和单株产量相关,OsGDH1与千粒重相关。针对各氮代谢基因,分别找到了其影响表型的最优等位基因和单倍型。利用近等基因系对其中部分等位基因的遗传效应进行了验证。这些信息可应用于水稻育种实践中。7.与普通野生稻相比,OsAMT1;1在栽培稻(包括籼稻和粳稻)中的核苷酸多样性极低(仅为普通野生稻的2.3%),且Tajima’s D和Fu和Li’s D*都达到了负的显著或极显著水平,暗示OsAMT1;1受到了正选择作用。绝大部分(182/190)栽培稻含有相同的OsAMT1;1等位基因;与两个其它氮代谢基因(Loc_Os01g48960和Loc_Os02g50240)相比,OsAMT1;1在地方品种和优良品种中的核苷酸多样性显著下降。8.在94份栽培稻和19份普通野生稻中,对OsAMT1;1附近7个DNA片段进行了测序。结果表明,与普通野生稻相比,栽培稻的核苷酸多样性在OsAMT1;1前后大约100 kb的区域内急剧减少;EHH(Extended Haplotype Homozygosity)分析表明,在这100 kb的区域内,LD在栽培稻中维持着较高的水平而在普通野生稻中衰减得非常迅速。因此,认为OsAMT1;1受到了强的选择作用。
摘要第8-11页
Abstract第11-13页
缩略词表第14-15页
1 文献综述第15-47页
    1.1 前言第15页
    1.2 植物体内氮的营养特征第15-17页
        1.2.1 植物体内氮的含量与分布第15-16页
        1.2.2 植物体内氮的存在形式及其生理功能第16-17页
    1.3 植物体对氮素的吸收、运转、同化和再分配第17-19页
        1.3.1 氮素的吸收和运转第17-18页
        1.3.2 氮素的同化第18页
        1.3.3 氮素的再分配第18-19页
    1.4 植物氮代谢中的重要基因第19-24页
        1.4.1 铵转运子(AMT)第19-20页
        1.4.2 肖酸根转运子(NRT)第20页
        1.4.3 肖酸还原酶(NR)第20-21页
        1.4.4 谷氨酰胺合成酶(GS)第21-22页
        1.4.5 谷氨酸合成酶(GOGAT)第22-23页
        1.4.6 谷氨酸脱氢酶(GDH)第23-24页
        1.4.7 天冬酰胺合成酶(AS)第24页
    1.5 植物氮营养高效基因型的选择指标第24-28页
        1.5.1 产量指标第24-25页
        1.5.2 氮代谢关键酶的酶活第25-26页
        1.5.3 叶绿素SPAD值第26页
        1.5.4 植物根系相关指标第26-27页
        1.5.5 其他指标第27-28页
    1.6 水稻种质资源研究进展第28-30页
        1.6.1 核心种质概念的提出第28页
        1.6.2 核心种质的特点第28-29页
        1.6.3 水稻核心种质研究进展第29-30页
    1.7 单核苷酸多样性与选择、进化第30-42页
        1.7.1 单核苷酸多样性概述第30-31页
        1.7.2 DNA测序技术的发展第31-37页
            1.7.2.1 Sanger法测序第31-32页
            1.7.2.2 Roche公司454测序技术第32-33页
            1.7.2.3 Illumina公司Solexa测序技术第33-34页
            1.7.2.4 ABI公司SOLiD测序技术第34-35页
            1.7.2.5 Helicos公司单分子测序技术第35-36页
            1.7.2.6 Pacific Biosciences公司单分子实时测序技术第36页
            1.7.2.7 Oxford Nanopore公司纳米孔单分子测序技术第36-37页
        1.7.3 检测选择作用的一般方法第37-40页
            1.7.3.1 基于种内多态性的中性检测第37-38页
                1.7.3.1.1 Tajima's D检验第37-38页
                1.7.3.1.2 Fu和Li的D和F检验第38页
                1.7.3.1.3 Fay和Wu的H检验第38页
            1.7.3.2 基于种间多态性的中性检验第38-39页
                1.7.3.2.1 McDonald和Kreitman(MK)检验第38-39页
                1.7.3.2.2 Hudson-Kreitman-Aquade(HKA)检验第39页
                1.7.3.2.3 Ka/Ks检验第39页
            1.7.3.3 基于单倍型比较的检验方法第39-40页
                1.7.3.3.1 Long Range Haplotypes(LRH)检验第40页
                1.7.3.3.2 iHH Score(iHS)检验第40页
                1.7.3.3.3 Linkage Disequilibrium Decay(LDD)检验第40页
        1.7.4 一些受到选择作用的基因第40-42页
    1.8 植物关联分析研究进展第42-45页
        1.8.1 连锁不平衡(LD)的度量及其影响因素第42-43页
        1.8.2 关联分析的基本方法及其影响因素第43-44页
        1.8.3 关联分析的应用第44-45页
    1.9 本研究的目的与意义第45-47页
2 氮代谢基因核苷酸多样及其与产量性状的关联分析第47-96页
    2.1 材料与方法第47-64页
        2.1.1 研究材料第47-53页
        2.1.2 田间种植与表型调查第53-56页
        2.1.3 测序基因的选择第56页
        2.1.4 DNA的抽提第56-57页
        2.1.5 PCR扩增与测序第57-61页
        2.1.6 SSR标记与群体结构第61-63页
            2.1.6.1 标记来源第61页
            2.1.6.2 PCR扩增与显色反应第61-63页
            2.1.6.3 群体结构第63页
        2.1.7 数据分析第63-64页
    2.2 结果与分析第64-91页
        2.2.1 关联群体各表型性状的变异第64-68页
        2.2.2 核苷酸多样性分析第68-75页
        2.2.3 中性检测第75页
        2.2.4 群体结构第75-76页
        2.2.5 连锁不平衡(LD)分析第76-78页
        2.2.6 单倍型分析第78-83页
        2.2.7 多态性位点-表型的关联分析第83-87页
        2.2.8 单倍型-表型的关联分析第87-89页
        2.2.9 等位基因效应的验证第89-91页
    2.3 讨论第91-96页
        2.3.1 核苷酸多样性水平第91-92页
        2.3.2 氮代谢基因的籼-粳分化第92-93页
        2.3.3 连锁不平衡与关联分析第93-94页
        2.3.4 对水稻育种的意义第94-96页
3 OsAMT1;1基因多样性与选择性扫荡第96-122页
    3.1 材料与方法第96-100页
        3.1.1 研究材料第96页
        3.1.2 DNA的抽提第96页
        3.1.3 PCR扩增与测序第96页
        3.1.4 数据分析第96-100页
    3.2 结果与分析第100-112页
        3.2.1 OsAMT1;1核苷酸多样性分析第100-107页
        3.2.2 OsAMT1;1单倍型分析第107页
        3.2.3 OsAMT1;1周围的选择性扫荡第107-112页
    3.3 讨论第112-122页
        3.3.1 OsAMT1;1核苷酸多样性与选择第112-116页
        3.3.2 OsAMT1;1受到选择作用的原因第116-120页
        3.3.3 OsAMT1;1的进化过程第120-122页
参考文献第122-140页
附录第140-141页
致谢第141页
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