光敏色素B调控水稻干旱胁迫耐性的机理研究

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对高等植物而言,光不仅是光合作用的能量来源,也是调节植物生长发育最基本的信号。高等植物利用光敏色素(phytochrome,phy)感受红光/远红光,参与调节植物从种子萌发到果实成熟的多个发育过程。水稻光敏色素基因家族包括3个成员,PHYA、PHYB和PHYC。在对水稻光敏色素突变体的研究中,我们发现水稻phyB缺陷型突变体(phyB)具有较强的干旱胁迫耐性,因此可被用做一种重要的、耐旱新种质资源。本研究用phyB突变体和野生型水稻作为研究材料,围绕根系水分吸收能力和地上部分水分散失两个方面,在生理学和分子生物学水平上分析了与水稻干旱胁迫耐性相关的生理变化和相关基因,旨在揭示水稻phyB调控植物干旱胁迫耐性的机制。主要结果如下:1.水稻phyB突变体具有较强的干旱胁迫耐性将在正常条件下生长的水稻野生型和phyB突变体(六叶期)停止浇水13天,发现大部分野生型水稻叶片萎蔫,而phyB突变体叶片仍保持展开。停止浇水16天后复水12天,45.7%的野生型水稻恢复生长,而90%的phyB突变体恢复生长。这说明phyB突变体具有较强的干旱胁迫耐性。采用15%PEG溶液处理野生型和phyB突变体1~5天,发现phyB突变体在正常和干旱胁迫条件下的脯氨酸和可溶性糖含量均高于野生型,说明phyB突变体具有较高的渗透调节能力。2. phyB突变体与野生型植株的根系没有明显差异将水稻野生型和phyB突变体种子根部避光在0.5%的琼脂培养基中培养至两叶期。结果显示,phyB突变体的主根长度明显大于野生型,而根/冠比无显著差别。当野生型和phyB突变体根部避光在蛭石中培养至六叶期时,野生型和phyB突变体的根长也无显著差别。利用根系分析仪进一步测定发现,野生型和phyB突变体的根系长度、表面积以及直径也均没有显著性差异。这说明根系生长及表面积不是影响phyB突变体较强干旱胁迫耐性的主要因素。3. phyB突变体表现出较低的失水速率和蒸腾速率比较野生型和3个不同phyB等位基因突变体(phyB1,phyB2,phyB5)离体叶片的失水速率。结果表明,phyB突变体的失水速率明显小于野生型。进一步利用美国便携式光合仪(LI-COR LI-6400)在强制光源(1500μmol m-2s-1)下测定野生型和phyB突变体的光合速率、气孔导度、蒸腾速率,发现phyB突变体的光合速率、气孔导度、蒸腾速率均低于野生型,而水分利用率在phyB突变体和野生型之间没有显著差异。此外我们还发现phyB突变体植株的总叶面积明显小于野生型。这些结果说明,在同样生长条件下,与野生型相比phyB突变体就可能具有较低的蒸腾量。这些特征可能是决定phyB突变体具有较强干旱胁迫耐性的关键因素。4. phyB正调控气孔密度通过印迹法比较了野生型和phyB突变体六叶期发育完全的第三叶、第四叶和第五叶的气孔数目和大小。结果表明,phyB突变体单位面积上的气孔数目和气孔器长度均显著小于野生型。气孔密度的降低将减少植物与外界环境之间水分或二氧化碳的交换,导致光合速率和蒸腾速率降低、失水速率降低。5. phyB负调控气孔发育相关基因ERECTA的表达为了分析phyB调控气孔密度的分子机制,我们利用实时荧光定量PCR分析了水稻气孔发育相关基因在野生型和phyB突变体中的表达模式。结果表明,无论在水稻幼苗时期的分生组织和叶原基(种子萌发2天和4天),还是六叶期植株的成熟叶,ERECTA(ER)家族基因(分别命名为ER、ER1/2和ERL)在phyB突变体中的表达量均显著高于野生型。已有报道表明,ERECTA基因负调控拟南芥气孔发育。据此推测,phyB可能通过负调控ER基因的表达而影响水稻叶片气孔密度。6. ERECTA基因负调节转基因烟草叶片的水分蒸腾为了进一步研究ERECTA基因对水分代谢的影响,我们构建了植物过量表达载体pCAMBIA1390-Ubi-OsERL,转化烟草。结果发现,当停止浇水18天时,野生型植株的叶片出现萎蔫,颜色较黄,而转基因株系仍可以维持一定膨压;各转基因株系植株离体叶片的失水速率显著低于野生型;通过便携式光合仪(LI-COR LI-6400)在强制光源(1500μmol m-2s-1)下测定野生型和转基因烟草植株的光合速率、气孔导度和蒸腾速率,发现野生型和转基因株系植株的光合速率没有显著差异,而转基因株系植株的蒸腾速率低于野生型,水分利用率高于野生型。以上说明,OsERL基因的过量表达可能通过降低植株的失水速率和蒸腾速率来调节植株的耐旱性。观测野生型和转基因烟草植株第六片完全展开叶中段位置上的气孔分布,结果表明各转基因株系植株单位面积上的气孔数目均少于野生型,表皮细胞明显大于野生型,而气孔发育形态没有明显差异。这些结果表明,水稻ERL基因在烟草中表达引起表皮细胞增大,从而导致气孔密度减小、失水速率和蒸腾速率降低。7. phyB介导的红光信号抑制ERECTA基因的表达phyB是如何影响ERECTA基因的表达呢?利用荧光定量PCR,我们比较了野生型和phyB突变体在黑暗和红光条件下的基因表达水平。结果表明,在野生型中,ERECTA基因在红光下的表达水平低于黑暗条件下的水平,这表明红光抑制ERECTA基因的表达。然而在phyB突变体中,红光对ERECTA基因的抑制效果明显减弱。据此推测phyB感受红光抑制ERECTA基因的表达。8. phyB突变体的耐旱性与ABA途径有关ABA是一种重要的胁迫激素。为了分析phyB突变体较强的干旱胁迫耐性是否与ABA途径有关,我们利用种子萌发实验比较了野生型和phyB突变体对外源ABA的敏感性。结果表明,phyB突变体对ABA更为敏感。利用实时荧光定量PCR,我们比较了ABA代谢相关基因在野生型和phyB突变体中的表达水平。结果表明,ABA合成基因在phyB突变体中的表达水平高于野生型,而降解基因低于野生型。据此推测,phyB负调控ABA合成基因的表达,正调控ABA降解基因的表达。我们比较了野生型和phyB突变体干旱处理不同时间后的基因表达图谱,并通过半定量PCR进一步验证其中与ABA途径相关基因的表达模式。结果表明,多个ABA途径调控的、与干旱胁迫耐性相关的基因如脱水素基因、蛋白磷酸酶基因、bZIP基因和胁迫诱导基因等,在phyB突变体中的表达显著高于野生型,据此推测ABA依赖途径与phyB突变体较强的干旱胁迫耐性有关。总之,本实验通过研究正常和干旱胁迫条件下,水稻phyB突变体与野生型的相关生理指标、气孔发育相关基因表达及功能、以及ABA途径相关基因的表达模式探讨光敏色素参与耐旱的机理。我们初步认为,一方面,phyB负调控ERECTA基因的表达,影响单位面积气孔数目,导致蒸腾速率降低;另一方面,phyB通过影响ABA代谢基因和ABA信号途径基因的表达而负调控水稻对ABA依赖的胁迫途径,从而影响ABA依赖的干旱胁迫耐性。这些因素共同决定着phyB突变体具有较强的干旱胁迫耐性。
摘要第8-11页
Abstract第11-14页
英文缩写符号及中英文对照表第15-17页
第一部分 文献综述第17-33页
    1 植物耐旱性反应的机制第17-25页
        1.1 植物气孔的发育第17-20页
            1.1.1 控制气孔发育的基本遗传途径第18-19页
            1.1.2 调控气孔发育基本途径的相关基因及调控机制第19-20页
        1.2 ABA 途径在植物干旱胁迫反应中的作用第20-24页
            1.2.1 ABA 代谢调控途径第20-22页
            1.2.2 ABA 依赖与ABA 不依赖的干旱胁迫反应及其信号转导途径第22-24页
        1.3 渗透调节第24-25页
    2 光信号影响植物干旱胁迫反应第25-28页
        2.1 光对气孔发育的调控第25-26页
        2.2 光对植物根系发育的影响第26-27页
        2.3 光敏色素介导的光信号与ABA 反应第27-28页
    3 光敏色素所介导的光信号转导及其在植物生长发育中的作用第28-31页
        3.1 光敏色素第28-30页
        3.2 光敏色素介导的光信号转导的分子机制第30-31页
    4 论文选题的目的及意义第31-33页
第二部分 实验论文第33-92页
    第一章 光敏色素B 介导的光信号对水稻干旱胁迫耐性的影响第33-50页
        1 实验材料第33-34页
            1.1 植物材料第33-34页
            1.2 主要化学试剂第34页
            1.3 主要仪器设备第34页
        2 实验方法第34-39页
            2.1 实验材料的培养及处理第34页
            2.2 耐旱性测定第34-36页
                2.2.1 干旱胁迫处理第34-35页
                2.2.2 可溶性糖含量测定第35页
                2.2.3 脯氨酸含量测定第35-36页
            2.3 根系生长的测定第36-37页
                2.3.1 材料的培养第36-37页
                2.3.2 主根长度测定第37页
                2.3.3 根冠比测定第37页
                2.3.4 根长度、表面积和直径测定第37页
            2.4 叶片生长及气孔相关指标测定第37-39页
                2.4.1 总叶面积测定第37页
                2.4.2 离体叶片失水速率测定第37-38页
                2.4.3 光合速率、蒸腾速率、气孔导度和水分利用率测定第38页
                2.4.4 气孔密度和长度测定第38-39页
        3 实验结果第39-47页
            3.1 干旱胁迫处理前后野生型和phyB 突变体的生长状况第39-41页
            3.2 干旱胁迫条件下可溶性糖和脯氨酸含量的变化第41-42页
            3.3 野生型及phyB 突变体根系生长情况比较第42-43页
            3.4 野生型和phyB 突变体植株总叶面积比较第43-44页
            3.5 野生型和phyB 突变体的离体叶片失水速率第44-45页
            3.6 野生型和phyB 突变体的光合速率、蒸腾速率、气孔导度及水分利用率第45-46页
            3.7 野生型和phyB 突变体叶片的气孔数目和长度第46-47页
        4 讨论第47-50页
    第二章 气孔发育相关基因在水稻phyB 突变体中的表达第50-80页
        1 实验材料第50-51页
            1.1 植物材料第50页
            1.2 菌株和质粒载体第50页
            1.3 酶和生化试剂第50页
            1.4 培养基、常用生化及分子生物学试剂第50-51页
            1.5 主要仪器设备第51页
            1.6 分析软件第51页
        2 实验方法第51-62页
            2.1 水稻气孔发育相关基因的来源与基因芯片分析第51-52页
            2.2 荧光定量PCR 检测气孔发育相关基因的表达第52-55页
                2.2.1 RNAiso 提取水稻叶片总RNA第52-53页
                2.2.2 反转录第53页
                2.2.3 Real-time PCR 操作方法第53-55页
            2.3 水稻ERECTA-like(ERL)基因植物表达载体的构建和烟草遗传转化第55-59页
                2.3.1 水稻ERECTA-like(ERL)基因cDNA 序列的获得第55页
                2.3.2 PCR 产物(OsERL 编码区)与T-载体的连接第55-56页
                2.3.3 大肠杆菌感受态细胞制备及转化第56页
                2.3.4 质粒提取和酶切鉴定第56-57页
                2.3.5 植物表达载体的构建第57页
                2.3.6 植物表达载体的农杆菌转化第57-58页
                2.3.7 农杆菌质粒的提取与鉴定第58页
                2.3.8 叶盘法转化烟草第58-59页
            2.4 转基因烟草的外源基因检测第59-60页
                2.4.1 PCR 检测第59-60页
                2.4.2 RT-PCR 检测第60页
            2.5 转基因烟草的生理学分析第60-61页
                2.5.1 耐旱性测定第60页
                2.5.2 离体叶片失水速率测定第60页
                2.5.3 光合速率、蒸腾速率、气孔导度和水分利用率测定第60-61页
                2.5.4 表皮细胞面积、气孔大小、数目和气孔指数测定第61页
            2.6 荧光定量PCR 检测水稻ERECTA-like 基因在红光下的表达第61-62页
                2.6.1 植物材料的培养第61页
                2.6.2 RNAiso 提取水稻叶片总RNA第61页
                2.6.3 反转录第61页
                2.6.4 Real-time PCR 操作方法第61-62页
        3 实验结果第62-77页
            3.1 水稻中气孔发育相关的同源基因的分子特征第62-66页
            3.2 水稻气孔发育相关基因的芯片结果及表达模式验证第66-67页
            3.3 气孔发育相关基因在野生型和phyB 突变体叶原基和分生组织中的表达水平第67-69页
            3.4 水稻ERECTA-like 基因植物表达载体的构建及转基因烟草的遗传分析第69-72页
                3.4.1 目的cDNA 获得第69-70页
                3.4.2 植物表达载体pCAMBIA1390-Ubi-OsERL 的构建第70页
                3.4.3 转基因烟草的遗传分析第70-72页
            3.5 转基因植株的耐旱性分析第72-73页
            3.6 转基因植株离体叶片的失水速率第73页
            3.7 转基因植株的光合速率、蒸腾速率及水分利用率第73-74页
            3.8 野生型和转基因植株气孔密度和气孔指数的比较第74-76页
            3.9 红光对水稻ERECTA 家族基因表达的影响第76-77页
        4 讨论第77-80页
    第三章 ABA 途径与水稻phyB 突变体耐旱性的相关性分析第80-92页
        1 实验材料第80页
        2 实验方法第80-84页
            2.1 水稻种子的ABA 处理第80页
            2.2 Real-time PCR 检测ABA 代谢途径相关基因的表达第80-81页
                2.2.1 RNAiso 提取水稻叶片总RNA第80页
                2.2.2 反转录第80-81页
                2.2.3 Real-time PCR 操作方法第81页
            2.3 水稻ABA 信号途径相关基因的表达谱分析第81-82页
            2.4 半定量RT-PCR 检测ABA 应答途径相关基因的表达第82-84页
                2.4.1 RNAiso 提取水稻叶片总RNA第82页
                2.4.2 反转录第82-83页
                2.4.3 半定量PCR第83-84页
        3 实验结果第84-89页
            3.1 水稻野生型和phyB 突变体对ABA 的敏感性分析第84-86页
            3.2 ABA 代谢途径相关基因在野生型和phyB 突变体中的表达模式分析第86-87页
            3.3 野生型和phyB 突变体干旱处理不同时间的基因表达图谱第87-88页
            3.4 ABA 信号途径相关基因在干旱胁迫条件下的表达差异分析第88-89页
        4 讨论第89-92页
第三部分 总结第92-94页
参考文献第94-105页
附录第105-108页
攻读博士学位期间整理发表的论文第108-109页
致谢第109页
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